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  渔业科学进展  2016, Vol. 37 Issue (4): 135-139  DOI: 10.11758/yykxjz.20150522001
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引用本文 

耿小雪, 王小霞, 周怡, 徐玮, 张文兵, 麦康森. 对虾白斑综合征病毒囊膜蛋白VP28和VP26的毕赤酵母组成型分泌表达[J]. 渔业科学进展, 2016, 37(4): 135-139. DOI: 10.11758/yykxjz.20150522001.
GENG Xiaoxue, WANG Xiaoxia, ZHOU Yi, XU Wei, ZHANG Wenbing, MAI Kangsen. Secretive Expression of White Spot Syndrome Virus Envelope Proteins VP28 and VP26 in Pichia pastoris Induced by Constitutive Promoter[J]. PROGRESS IN FISHERY SCIENCES, 2016, 37(4): 135-139. DOI: 10.11758/yykxjz.20150522001.

基金项目

国家公益性行业(农业)专项经费项目(201103034)资助

作者简介

耿小雪,E-mail: gengxue2013@163.com

通讯作者

张文兵,教授,Email:wzhang@ouc.edu.cn

文章历史

收稿日期:2015-05-22
收修改稿日期:2015-05-26
对虾白斑综合征病毒囊膜蛋白VP28和VP26的毕赤酵母组成型分泌表达
耿小雪, 王小霞, 周怡, 徐玮, 张文兵, 麦康森     
水产动物营养与饲料农业部重点实验室 海水养殖教育部重点实验室 中国海洋大学水产学院 青岛 266003
摘要: 近年来,重组VP28和VP26蛋白作为蛋白亚单位疫苗,在增强对虾抗白斑综合征病毒(WSSV)感染的过程中具有重要作用。本研究根据GenBank中WSSV的基因序列设计引物,以WSSV粗提液为模板进行普通PCR扩增,得到VP28和VP26基因,再用引物悬挂法将EcoRⅠ和XbaⅠ酶切位点分别添加到VP28和VP26基因的5´端和3´端。目的基因经双酶切后插入到表达载体pGAPZαA,转化TOP10大肠杆菌,经博莱霉素(Zeocin)抗性筛选阳性重组酵母表达载体。AvrⅡ酶切线性化之后,电击转化X-33毕赤酵母感受态细胞,经Zeocin抗性筛选得到阳性重组酵母。SDS-PAGE电泳分析重组酵母表达上清液的目的蛋白,没有检测到VP28和VP26重组蛋白。随后,采用蛋白质银染法,结果显示,与空载pGAPZαA组相比,VP28和VP26表达上清液组有明显的条带,证明VP28和VP26在毕赤酵母中成功表达,蛋白分子量大小约为32 kDa。
关键词: 白斑综合征病毒    VP28    VP26    重组表达    毕赤酵母    
Secretive Expression of White Spot Syndrome Virus Envelope Proteins VP28 and VP26 in Pichia pastoris Induced by Constitutive Promoter
GENG Xiaoxue, WANG Xiaoxia, ZHOU Yi, XU Wei, ZHANG Wenbing, MAI Kangsen     
Key Laboratory of Mariculture, Ministry of Education Fisheries College, Ocean University of China, Qingdao 266003
Corresponding author: ZHANG Wenbing, Email:wzhang@ouc.edu.cn
Abstract: WSSV has been a globally recognized highly harmful pathogen in shrimp farming industry that causes tremendous economic loss. The envelope proteins of WSSV, VP28 and VP26, play important roles in interacting with host cells, initiating virus infection and mediating virus intrusion. In this study, we used pGAPZαA as the expression vector and X-33 Pichia pastoris as the host cell to express VP28 and VP26 in a secretive manner. The coding sequences of VP28 and VP26 (GenBank: AF332093.3) were amplified from WSSV using PCR, and the sequences of EcoR I (GAATTC) and Xba I (TCTAGA) were added to the 5 and 3 ends of the target genes. The purified PCR products were then cloned into the EcoR I/Xba I sites of the pGAPZαA vector. Sequencing analysis verified whether the target genes were correctly inserted into the reading frame. The construct was linearized by Bln I (Avr Ⅱ) and then was integrated into P. pastoris X-33 through electroporation while being screened by Zeocin. The expressed proteins were identified with SDS-PAGE. The VP28 and VP26 recombinant proteins could no
Key words: White spot syndrome virus    VP28    VP26    Recombinant expression    Pichia pastoris    

对虾白斑综合征病毒(White spot syndrome virus,WSSV)严重危害着全球对虾养殖业,造成巨大的经济损失。WSSV致病宿主范围非常广,致病力也非常强,对虾感染该病毒后死亡率高达100%。然而,WSSV全基因组序列测序的完成,使研究者对WSSV的结构基因及其表达的蛋白的性质和功能有了全面的认识(陈文博等,2009)。运用蛋白质组学的方法,已经鉴别出40多种WSSV的结构蛋白,其中22种是囊膜蛋白,主要的囊膜蛋白有VP19、VP28、VP31、VP36B、VP38A、VP51B和VP53A等,主要的囊膜被膜蛋白有VP26、VP36A、VP39A和VP95等(Tsai et al,2006; Leu et al,2009)。通过免疫共沉淀法和酵母双杂交法研究了WSSV结构蛋白之间的互相作用,发现VP28、VP51A、VP19和VP37这4种蛋白位于病毒颗粒的最外层,预测它们可能在识别宿主细胞表面的模式、识别受体方面具有重要的作用(Chang et al,2010)。Yi等(2004)研究发现,VP28是WSSV侵入对虾细胞所必需的,而VP26负责将VP28蛋白与核衣壳蛋白连接起来(Wan et al,2008) 。

一般认为,对虾缺乏获得性免疫系统,只能依赖天然性免疫系统来抵抗外源病原体的入侵。然而,现在越来越多的研究发现,DNA疫苗(Rajeshkumar et al,2009; Mu et al,2012)和蛋白质亚单位疫苗(丁晶等,2013; Satoh et al,2008)可以激活对虾的免疫系统、增强对虾抵抗病毒侵染的能力,这些研究颠覆了人们对对虾免疫认识的传统思维,为寻求防治WSSV的有效途径带来了希望。DNA疫苗是在分子生物学技术基础上发展起来的特殊疫苗,它具有免疫效果好、生产成本低和临床应用方便等优点(杨海等,2013)。但DNA疫苗的本质毕竟是核酸,存在着基因转移到宿主的可能性,其使用的安全性必须放在最关键的位置。蛋白质亚单位疫苗的本质是蛋白质,生物体利用蛋白质并将其用于机体本身的生命活动,不会造成危害,是一种安全的疫苗。

本研究选取VP28和VP26这两种WSSV囊膜蛋白作为研究对象,利用毕赤酵母表达系统来组成型分泌表达这两种目的蛋白,以期为规模化制备对虾免疫增强剂提供基础数据。

1 材料与方法 1.1 材料 1.1.1 质粒与菌种

表达质粒pGAPZαA和X-33毕赤酵母(Invitrogen)为本实验室-80℃保存。E.coli Competent Cells Top10购自北京天根生物科技有限公司。WSSV粗提液为本实验室-80℃保存。

1.1.2 实验试剂

pEASY-T1 simple Cloning Kit和T4 DNA Ligase购于北京全式金生物技术有限公司;Zeocin购自Invitrogen公司;快速琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒、2 kb/5 kb DNA Marker、高纯度质粒小提试剂盒、常规PCR用2×Es Taq MasterMix和蛋白银染试剂盒购自康为世纪生物公司(CWBIO,北京);限制性内切酶EcoRⅠ、XbaⅠ和AvrⅡ购于TaKaRa公司;葡萄糖为AMRESCO公司产品;酵母提取物(Yeast Extract)、胰蛋白胨(Tryptone)和琼脂粉均购于BBI公司,其他均为国药分析纯。

1.1.3 引物设计

根据NCBI中提交的WSSV的全基因组cDNA序列(GenBank:AF332093.3) ,设计含EcoRⅠ和XbaⅠ酶切位点的VP28基因引物xVP28-F、xVP28-R,VP26基因引物xVP26-F、xVP26-R。根据Invitrogen公司pGAPZαA手册提供的引物序列pGAP-F、AOX1-R,委托生工生物工程(上海)股份有限公司合成,xVP28-F(5'-3'):CCGGAATTCATGGATCTTTCTTTCAC,xVP28-R(5´-3´):GCTCTAGATTACTCGGTCTCAGTGC。xVP26-F(5´-3´):CCGGAATTCATGGAATTTGGCAACC,xVP26-R(5´-3´):GCTCTAGATTACTTCTTCTTGATTTCG。PGAP-F(5´-3´):GTCCCTATTTCAATCAATTGAA,AOX1-R(5´-3´):GCAAATGGC ATTCTGACATCC。引物中加下划线部分序列分别为EcoR I、Xba I酶切识别位点,且在酶切位点前引入了保护碱基。

1.2 方法 1.2.1 VP28和VP26基因的获得

取-80℃保存的WSSV粗提液作为模板,以引物对xVP28-F/xVP28-R和xVP26-F/xVP26-R分别进行普通PCR扩增,反应体积为50 μl,反应条件为:94℃预变性5 min;94℃变性30 s,62℃/58℃退火30 s(VP28/VP26) ,72℃延伸1 min,35个循环;72℃延伸10 min。采用快速琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒回收VP28和VP26目的片段。

pGAPZaA目的基因重组表达载体的构建使用EcoRⅠ和XbaⅠ对空载pGAPZaA、VP28和VP26基因进行双酶切,切胶回收后T4连接酶于25℃连接30 min。转化大肠杆菌Top10感受态细胞,在含25 μg/ml Zeocin LB平板上进行抗性筛选,挑取阳性克隆委托生工生物工程(上海)股份有限公司测序,将测序正确的重组表达质粒分别命名为pGAPZaA、pGAPZaA-VP28和pGAPZaA-VP26。

1.2.3 重组表达质粒电转化毕赤酵母

使用AvrⅡ酶切线性化重组质粒pGAPZaA、pGAPZaA-VP28和pGAPZaA-VP26。参照Invitrogen公司毕赤酵母操作手册制备X-33酵母感受态细胞。将线性化质粒电击转化X-33酵母,然后涂布于含100 μg/ml Zeocin YPDS平板上,30℃培养3 d左右,筛选阳性克隆。提取阳性酵母基因组DNA作为模板,以pGAP-F和AOX1-R作为上下游引物进行普通PCR扩增,阳性重组酵母分别为X-33/pGAPZaA-VP28和X-33/pGAPZaA-VP26,X- 33/pGAPZaA作为空白对照。

1.2.4 重组酵母的表达与检测

挑取阳性重组酵母分别接种至5 ml Zeocin抗性的YPD液体培养基中,在30℃、250 r/min的条件下过夜培养。取200 μl上述活化菌液接种至装有50 ml新鲜YPD培养基的250 ml三角摇瓶中,30℃、250 r/min振荡培养72 h。4℃、12000×g离心3 min,上清液经液氮速冻后,保存于-80℃冰箱。

分别取40 μl X-33/pGAPZaA-VP28、X-33/pGAP ZaA-VP26和X-33/pGAPZaA蛋白发酵上清液,加入10 μl 5×蛋白质上样缓冲液,混匀后,99℃金属浴10 min,然后12000 ×g离心2 min,取离心后的上清液上样,取5 μl蛋白质分子量标准作为分子量参照,进行SDS- PAGE蛋白质电泳。电泳结束后,分别采用R-250考马斯亮蓝染色和蛋白质银染来检测目的蛋白。

2 结果 2.1 VP28 和VP26基因的扩增

VP28和VP26的基因是以WSSV的DNA粗提液为模板,进行普通PCR扩增得到的,琼脂糖凝胶电泳结果如图 1所示,在500-750 bp之间有明显的条带,这与预测的VP28和VP26基因的片段大小均为632 bp相符。

图 1 VP28和VP26 PCR扩增结果 Figure 1 PCR amplification of VP28 and VP26 gene 1-2: VP28; 3-4: VP26
2.2 pGAPZaA-VP28和pGAPZaA-VP26重组质粒的鉴定

用T4 DNA Ligase将酶切后的片段与具有相同黏性末端的pGAPZaA表达载体连接,从而构建好重组表达载体,将得到的连接产物转化大肠杆菌Top10,经Zeocin抗性筛选后,挑取抗性单克隆进行菌落PCR鉴定,PCR产物电泳结果见图 2,与目的条带应为1172 bp的理论值相符。取阳性克隆测序,测序结果经MEGA 5.05软件分析,可证明重组表达载体序列完全正确,无移码错配。

图 2 重组质粒菌落PCR Figure 2 PCR identification of the recombinant plasmid 1-4: pGAPZaA-VP28; 5-8: pGAPZaA-VP26
2.3 重组酵母发酵上清液SDS-PAGE电泳考染结果

挑取阳性酵母转化子进行发酵,发酵上清液用于蛋白质凝胶电泳,电泳结束后采用考马斯亮蓝R-250染色,染色结果见图 3,结果显示,与空载pGAPZaA相比,含有VP28和VP26目的基因的酵母上清液的电泳没有特异的条带。因此,需要采用更灵敏的检测方法来确定目的蛋白是否成功表达。

图 3 VP28、VP26和空载重组酵母 SDS-PAGE电泳考染结果 Figure 3 SDS-PAGE analysis(R-250 staining)of the VP28 and VP26 recombinant protein expressed in X-33 1-3: X-33/pGAPZaA-VP28; 4-6:X-33/pGAPZaA-VP26; 7-9: X-33/pGAPZaA
2.4 重组酵母发酵上清液SDS-PAGE电泳银染结果

利用蛋白质银染法来进一步检测酵母发酵上清液中的目的蛋白,银染结果见图 4,与空载pGAPZaA酵母表达上清液组相比,pGAPZaA-VP28和pGAPZaA- VP26酵母表达上清液组在箭头所指的平行位置有明显的特异性条带。根据蛋白分子量标准预测VP28和VP26的蛋白分子量在32 kDa左右。

图 4 重组酵母SDS-PAGE电泳银染结果 Figure 4 SDS-PAGE analysis(silver staining)of the VP28 and VP26 recombinant protein expressed in X-33 P: X-33/pGAPZaA; 1-3: X-33/pGAPZaA-VP28; 4-6: X-33/pGAPZaA-VP26
3 讨论

随着基因工程和生物技术的发展,在体外表达功能蛋白已经成为一种高效可行的获取蛋白疫苗的方法。在对虾白斑综合征防治的研究中,WSSV重组蛋白可以诱发虾体产生抗WSSV侵染反应的结果已被许多研究者所证明,而这些WSSV重组蛋白被称为蛋白质亚单位疫苗,其中研究最多的是VP28病毒囊膜蛋白。魏克强等(2005) 利用杆状病毒感染家蚕蛹来成功表达VP28蛋白,Fu等(2008) 构建了pBS-H1-VP28枯草芽孢杆菌表达载体,并在枯草芽孢杆菌成功表达VP28蛋白,Satoh等(2008) 利用大肠杆菌成功表达了VP28和VP26蛋白,养殖实验均证明WSSV重组蛋白具有增强虾体抗WSSV感染的能力。

本研究使用毕赤酵母表达系统分泌性表达VP28和VP26目的蛋白,选用的表达载体是pGAPZaA,它属于组成型的表达载体,因为该表达载体的启动子是pGAP(三磷酸甘油醛脱氢酶启动子),使用该启动子表达目的蛋白时不需要使用甲醇诱导。毕赤酵母表达系统属于真核表达系统,对翻译后的蛋白质可以进行一定的加工,有利于真核生物蛋白的表达和活性的保持,优于原核表达系统。此外,表达产物可以分泌到细胞外,便于目的蛋白的纯化与分离,适合规模化生产。目前,利用该表达系统已经成功表达很多功能蛋白,如β-半乳糖苷酶、β-葡萄糖醛酸酶、羧肽酶B和羧酸酯酶等(Waterham et al,1997; Sears et al,1998; 张平涛,20081) ; Delroisse et al,2005)。使用组成型表达系统不需要更换碳源,发酵周期短,且可以采用连续发酵的方式进行大规模发酵,这些都给酵母发酵产业带来了新的视角和机遇。但是,使用毕赤酵母组成型表达系统外源蛋白时,有一个最主要的限制,就是本系统不能用于表达对酵母细胞有害的蛋白质。此外,毕赤酵母组成型表达系统能否高效分泌性表达外源蛋白,还与目的基因插入酵母基因组的位置与拷贝数、选用何种信号肽序列以及酵母培养条件(如温度、pH值、溶氧和营养物等)等有密切关系。

1) 张平涛. 鼠羧肽酶原B和蛇毒金属蛋白酶Alfimeprase两种蛋白在毕赤酵母中表达研究. 厦门大学硕士研究生学论文,2008

本研究首次尝试在毕赤酵母中组成型分泌表达VP28和VP26目的蛋白,经检测成功表达,但目的蛋白的表达量较低,推测有以下原因:(1) 发酵条件不合适:实验采用摇瓶小量发酵,无法控制发酵液的pH值、溶氧量以及营养物质的供给;(2) 没有筛选到高效表达的菌株:目的基因不同拷贝数的插入,甚至不同的阳性菌株,目的蛋白的表达量都有可能不同,实验缺乏有效的检测高效表达菌株的方法;(3) 信号肽选用不合适:本研究采用的是酵母本身的信号肽序列-α-交换因子,该信号肽可能不适合引导VP28和VP26分泌表达;(4) VP28和VP26蛋白本身可能不适合在毕赤酵母中组成型分泌表达。因此,还需要大量相关的研究来解释这一现象的真实原因。尽管如此,本研究还是能为研究WSSV蛋白亚单位疫苗的研究提供实践经验和基础数据,为WSSV蛋白亚单位疫苗的规模化使用的前景奠定一些基础。

参考文献
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