2. 农业部海洋渔业可持续发展重点实验室 中国水产科学研究院黄海水产研究所 青岛 266071
2. Key Laboratory of Sustainable Development of Marine Fisheries, Ministry of Agriculture, Yellow Sea Fisheries Research Institute, Chinese Academy of Fishery Sciences, Qingdao 266071
微卫星标记 (Simple sequence repeat, SSR) 因具有多态性丰富、共显性等优点而被广泛应用于种群的遗传结构分析、遗传连锁图谱构建和分子标记辅助育种等。与传统SSR开发技术相比,基于EST序列开发SSR具有成本低、周期短、与功能基因关联性强等特点而被广泛应用。在海洋双壳贝类中,EST-SSR标记的开发和应用已在泥蚶 (Tegillarca granosa)(董迎辉等, 2013)、文蛤 (Meretrix meretrix) (齐晓艳等, 2013)、蛤仔 (Ruditapes variegata)(闫路路等, 2015)、缢蛏 (Sinonovacula constricta)(刘博等, 2012a、b)、马氏珠母贝 (Pinctada martensii)(王忠良等, 2015) 和虾夷扇贝 (Patinopecten yessoensis)(李云峰等, 2010) 等多种贝类中报道。
栉江珧 (Atrina pectinata) 隶属于软体动物门 (Mollusca)、瓣鳃纲 (Lamellibranchia)、翼形亚纲 (Pterimorphia)、贻贝目 (Mytiloida)、江珧科 (Pinnidae)、江珧属 (Atrina),俗称“土杯”、“马蹄”、“骚蛤蜊”等,广泛分布于温、热带近海海域,为海产底栖贝类,具有较高经济价值 (王如才等, 2008)。近年来,栉江珧遭遇生存环境的破坏和过度捕捞,出现资源量下降、种质资源退化和遗传多样性降低等问题,因此,开展栉江珧群体的种质资源评估和保护非常有必要。
目前,有关栉江珧群体遗传结构的研究较少。主要有采用AFLP标记对栉江珧不同地理群体进行遗传多样性分析 (陈丽娜, 2012)1),而SSR标记都通过磁珠富集法开发 (陈晓姣, 20122); 白临建, 20123); 李明爽, 20084))。本研究基于前期的栉江珧转录组测序,从得到的EST数据库中筛选和开发微卫星标记,并应用于栉江珧青岛群体的遗传多样性分析,以期为栉江珧的种质资源评估和保护提供基础资料。
1) Chen LN. Analysis of genetic structure of the comb pen shell Atrina pectinata and development of microsatellite loci in Acrossocheilus labiatus. Master's Thesis of Jimei University, 2012 [陈丽娜.栉江珧的群体遗传结构及厚唇光唇鱼微卫星位点的研究.集美大学硕士研究生学位论文, 2012]
2) Chen XJ. Development of the microsatellite and genetic structure of Atrina pectinata population. Master's Thesis of Jimei University, 2012 [陈晓姣.栉江珧微卫星分子标记的发育及其群体遗传结构的研究.集美大学硕士研究生学位论文, 2012]
3) Bai LJ. Effects of morphometric traits on weight traits and microsatellite markers based genetic diversity in the Atrina pectinata. Master's Thesis of Shanghai Ocean University, 2012 [白临建.栉江珧形态性状对重量性状的影响及五个野生群体遗传多样性的微卫星分析.上海海洋大学硕士研究生学位论文, 2012]
4) Li MS. Identification of microsatellite markers and analysis of genetic diversity of Atrina pectinate. Master's Thesis of Nanjing Agricultural University, 2008 [李明爽.栉江珧微卫星标记的筛选及其遗传多样性的研究.南京农业大学研究生学位论文, 2008]
1 材料与方法 1.1 样品采集与DNA提取实验用栉江珧于2015年6月取自山东青岛野生群体,活体运回实验室,取30个个体解剖,剪取闭壳肌,于–80℃保存备用。采用常规酚–氯仿–异戊醇法提取DNA,然后用1%琼脂糖凝胶电泳检测DNA的完整性,并用分光光度计检测DNA的浓度和纯度。
1.2 SSR序列获得和引物设计根据本实验室转录组测序获得的EST序列,利用MISA软件进行微卫星序列搜素,搜索标准为二碱基至少重复6次,三碱基至少重复5次,四碱基至少重复5次,五碱基至少重复5次,六碱基至少重复5次。采用Primer premier 5.0软件设计引物,挑取120对引物由华大基因公司合成。
1.3 微卫星引物的筛选和优化将8个栉江珧个体的DNA混合成基因池,模板浓度调整至100 ng/μl。PCR反应体系20 μl:0.5 U Taq酶,2 μl 10×Taq Buffer (含Mg2+),2 μl dNTPs (10 mmol/L),上下游引物 (10 μmol/L) 各1 μl,补水至20 μl。PCR扩增反应条件:94℃预变性5 min;94℃变性45 s,退火温度45 s (退火温度视引物而定),72℃延伸45 s,35个循环;最后72℃延伸10 min。PCR产物用8%非变性聚丙烯酰胺电泳检测,银染。根据电泳图谱确定引物的最佳退火温度。然后分别用8个个体作为对象,使用筛选出的最适退火温度进行PCR扩增,反应体系和反应条件同上,产物经8%非变性聚丙烯酰胺电泳检测,银染,用于检测引物多态性。
1.4 青岛海区栉江珧群体SSR标记的多态性分析在栉江珧青岛群体30个个体中,根据引物筛选结果进行多态性验证,8%非变性聚丙烯酰胺电泳检测。根据电泳图谱,并参照引物设计时预期片段的大小统计条带,用POPGENE 1.31计算微卫星引物的等位基因数 (Na)、期望杂合度 (He)、观望杂合度 (Ho),PIC-CAL计算多态信息含量 (PIC)。
2 结果 2.1 栉江珧EST-SSR序列筛选在获得的127263条EST序列中,检测出含有SSR的EST序列10550条 (8.2%),包括二核苷酸重复8132条,三核苷酸重复2010条,四核苷酸重复401条,五核苷酸重复7条。二核苷酸重复最多,占77.08%;其次为三核苷酸和四核苷酸重复,分别占19.05%和3.80%;五核苷酸重复最少,占0.07%(表 1)。
在二核苷酸重复单元中,AC/GT最多,共3096条,占38.07%;其次是AT/TA和AG/CT,分别占32.97%和28.85%;CG/CG最少,共9条,占0.11%(表 2)。
在三核苷酸重复单元中,ATC/ATG最丰富,共625条,占31.09%;AAC/GTT和AAT/ATT分别有554和374条,分别占27.56%和18.61%;其次为AAG/CTT和ACC/GGT,分别占6.12%和5.30%;最少的是CCG/CGG,共2条,占总数的0.10%(表 3)。
利用Primer premier 5.0软件,对10550条含有SSR的EST进行引物设计,共设计3401对。随机选取120对引物合成,以8个青岛群体栉江珧个体组成的基因池为模板,退火温度上下波动5℃为梯度,对120对引物进行初步筛选。结果显示,有36对引物获得稳定、清晰的扩增片段,扩增成功率为30%;36对引物在青岛栉江珧群体中进行多态性检测,其中12对引物表现出多态性 (表 4),多态引物比例为33.3%。
利用筛选的12对多态性引物对青岛海区栉江珧群体的30个个体进行遗传变异分析,结果见表 5。12对引物共获得到42个等位基因,每对引物在青岛栉江珧群体中检测到2–5个等位基因,平均每个位点有3.5个等位基因,其中,c62721_g1位点的等位基因最少 (2个),c67433_g5位点的等位基因最多 (5个)。观测杂合度Ho、期望杂合度He、多态信息含量PIC分别为0.167–0.667、0.432–794、0.368–0.746,平均观测杂合度Ho、平均期望杂合度He、平均多态信息含量PIC分别为0.417、0.604、0.526。依据PIC判断标准:PIC < 0.25为低度多态,0.25 < PIC < 0.5为中度多态,PIC > 0.5为高度多态,12个多态性位点中,有6个高度多态位点 (PIC > 0.5),6个中度多态位点 (0.25 < PIC < 0.5),可以看出栉江珧EST-SSR在青岛群体中表现出较高的多态性,说明青岛栉江珧群体遗传多样性水平较高。
本研究利用栉江珧转录组测序获得的127263条EST序列进行SSR筛选,检出率为8.2%,结果与缢蛏EST中SSR比例 (8.89%) 相似 (刘博等, 2012a),但该比例低于马氏珠母贝EST-SSR出现频率 (13.34%) (王忠良等, 2015),高于菲律宾蛤仔 (Ruditapes philippinarum) EST-SSR出现频率 (3.57%)(闫喜武等, 2011)。造成这种差异的原因主要有筛选标准、数据库大小以及物种的不同。如,张秀英等 (2012)以3个不同标准对栉孔扇贝同一BES文库进行SSR筛选,筛选率随着筛选标准的提高而降低。同样,数据库丰富程度不同也会造成EST-SSR位点出现频率不同,王忠良等 (2015)和石耀华等 (2008)分别从马氏珠母贝74007和6979条EST序列中筛选得到9872和243个EST-SSR位点,其位点出现频率分别为13.34%和3.48%。在凡纳滨对虾 (Litopenaeus vannamei) 中也有相似的报道,王艳红等 (2011)和马宁等 (2013)对凡纳滨对虾不同数量的EST序列进行EST-SSR筛选,其筛选率也不同。
本研究中,栉江珧EST微卫星中以二核苷酸重复所占比例最高,其次是三核苷酸重复,分别占77.08%和19.05%,这和马氏珠母贝 (石耀华等, 2008) 和凡纳滨对虾 (王艳红等, 2011) 的研究结果相似。在位点多态率方面,本研究设计合成了120对EST-SSR引物,其中,36对引物获得稳定、清晰的扩增位点,扩增成功率为30.0%;12对引物表现出多态性,多态引物比例为33.3%,其比率分别低于G-SSR的63.15%、62.5% (李明爽, 2008)1)和81.25%、80.76% (白临建, 2012)2)。这与泥蚶 (周小龙等, 2013)、文蛤 (齐晓艳等, 2013) 和红鳍东方鲀 (郝君等, 2007) G-SSR位点多态率高于EST-SSR位点多态率结果相似。
1) Li MS. Identification of microsatellite markers and analysis of genetic diversity of Atrina pectinate. Master's Thesis of Nanjing Agricultural University, 2008 [李明爽.栉江珧微卫星标记的筛选及其遗传多样性的研究.南京农业大学研究生学位论文, 2008]
2) Bai LJ. Effects of morphometric traits on weight traits and microsatellite markers based genetic diversity in the Atrina pectinata. Master's Thesis of Shanghai Ocean University, 2012 [白临建.栉江珧形态性状对重量性状的影响及五个野生群体遗传多样性的微卫星分析.上海海洋大学硕士研究生学位论文, 2012]
刘博等 (2012a)得到的缢蛏EST-SSR平均观测杂合度Ho (0.569) 和平均期望杂合度He (0.490) 分别低于吴雪萍等 (2014)的结果 (缢蛏基因组SSR的Ho为0.6866,He为0.7525)。闫路路等 (2015)在研究基于转录组平台的蛤仔微卫星标记也得到了相似的结果,其所得的Na、Ho、He和PIC也分别低于Yasuda等 (2007)和An等 (2009)通过G-SSR得到的结果。本研究也得到了与之基本一致的结果,平均每个位点产生3.5个等位基因,Ho、He、PIC分别为0.417、0.604、0.526。与白临建 (2012)2)通过基因组来源SSR所得平均位点、Ho、He分别为6.43、0.4215、0.5857相比,除He略高外,其他均低,造成He略高的原因可能是标记本身不同造成的,也可能是实验所用的地理群体不同造成的,白临建 (2012)2)是使用蓬莱长岛县的栉江珧群体进行多态性引物的筛选,而本研究使用青岛地区的栉江珧进行多态性引物的筛选,具体原因有待于进一步探究。
本研究获得的12对EST-SSR引物,具有多态性丰富、稳定性高和重复性好等优点,并可应用于栉江珧群体的遗传多样性分析,揭示了栉江珧青岛群体的种质资源现状,将为栉江珧的种质资源保护提供重要的参考资料。
An HS, Kim EM, Park JY. Isolation and characterization of microsatellite markers for the clam Ruditapes philippinarum and cross-species amplification with the clam Ruditapes variegate. Conservation Genetics, 2009, 10(6): 1821-1823 DOI:10.1007/s10592-009-9824-1 | |
Dong YH, Wu GX, Yao HH, et al. Characterization of 34 polymorphic EST-SSR markers in Tegillarca granosa and their transferability in Anadara craticulata. Journal of Fisheries of China, 2013, 37(1): 70-77 [董迎辉, 吴国星, 姚韩韩, 等. 泥蚶34个EST-SSR标记的开发及在格粗饰蚶中的通用性检测. 水产学报, 2013, 37(1): 70-77] | |
Hao J, Sun XW, Meng XS, et al. Identification and application of microsatellite makers from BAC and ESTs sequence in redfin puffer (Takifugu rubripes). Journal of Dalian Fisheries University, 2007, 22(2): 97-101 [郝君, 孙效文, 孟雪松, 等. 红鳍东方鲀BAC数据库和ESTs数据库中微卫星的筛选与应用. 大连水产学院学报, 2007, 22(2): 97-101] | |
Li YF, Liu WD, Gao XG, et al. Construction of cDNA libraries from mantle and kidney of Japanese scallop (Mizuhopecten yessoensis) and ESTs analysis. Journal of Fishery Sciences of China, 2010, 17(3): 578-585 [李云峰, 刘卫东, 高祥刚, 等. 虾夷扇贝外套膜和肾脏组织cDNA文库构建以及EST的初步分析. 中国水产科学, 2010, 17(3): 578-585] | |
Liu B, Shao YQ, Teng SS, et al. Characterization, development and utilization of EST-derived microsatellites in Sinonovacula constricta. Oceanologia Et Limnologia Sinica, 2012a, 43(1): 132-137 [刘博, 邵艳卿, 滕爽爽, 等. 缢蛏 (Sinonovacula constricta) EST-SSR分布特征及引物开发利用. 海洋与湖沼, 2012a, 43(1): 132-137] | |
Liu B, Shao YQ, Teng SS, et al. Genetic variation of cultured population structure in Sinonovacula constricta using microsatellites. Chinese Agricultural Science Bulletin, 2012b, 28(2): 69-73 [刘博, 邵艳卿, 滕爽爽, 等. 乐清湾养殖缢蛏群体遗传结构的微卫星标记分析. 中国农学通报, 2012b, 28(2): 69-73] | |
Ma N, Zeng DG. Isolation of microsatellite sequences from Litopenaeus vannamei. Southwest China Journal of Agricultural Science, 2013(6): 2629-2633 [马宁, 曾地刚. 凡纳滨对虾微卫星序列的筛选. 西南农业学报, 2013(6): 2629-2633] | |
Qi XY, Dong YH, Yao HH, et al. Identification of 30 microsatellite markers in Meretrix meretrix and their transferability in Meretrix lamarckii and Meretrix lyrata. Journal of Fisheries of China, 2013, 37(8): 1147-1154 [齐晓艳, 董迎辉, 姚韩韩, 等. 文蛤30个微卫星标记的开发及在斧文蛤和帘文蛤中的通用性检测. 水产学报, 2013, 37(8): 1147-1154] | |
Shi YH, Hong K, Guo XM, et al. Microsatellite markers screening from EST sequences of Pinctada martensii Dunker. Journal Of Fisheries Of China, 2008, 32(2): 174-181 [石耀华, 洪葵, 郭希明, 等. 马氏珠母贝EST微卫星的筛选. 水产学报, 2008, 32(2): 174-181] | |
Wang RC, Wang ZP. Seawater shellfish culture. Qingdao: Publishing House of Ocean University of China, 2008: 532-534 [王如才, 王昭萍. 海水贝类养殖学. 青岛:中国海洋大学出版社, 2008: 532-534] | |
Wang YH, Hu CQ, Zhang LP, et al. A preliminary study on microsatellite markers screening from EST sequences of Litopenaeus vannamei. Journal of Fisheries of China, 2011, 35(7): 969-976 [王艳红, 胡超群, 张吕平, 等. 凡纳滨对虾EST微卫星标记初步筛选. 水产学报, 2011, 35(7): 969-976] | |
Wang ZL, Ding Y, Xu YH, et al. Polymorphism of EST-SSRs from Pinctada martensii based on transcriptom datasets. Oceanologia Et Limnologia Sinica, 2015, 46(3): 687-0 DOI:10.11693/hyhz20141200361 [王忠良, 丁燏, 许尤厚, 等. 基于转录组数据的马氏珠母贝EST-SSR位点的信息分析及其多态性检测. 海洋与湖沼, 2015, 46(3): 687-0] | |
Wu XP, Ma HT, Feng YY, et al. Isolation of microsatellite loci from razor clam Sinonovacula constricta and transferability to related species. Oceanologia Et Limnologia Sinica, 2014, 45(6): 1330-1337 [吴雪萍, 马海涛, 冯艳微, 等. 缢蛏 (Sinonovacula constricta) 微卫星标记的分离及近缘物种通用性. 海洋与湖沼, 2014, 45(6): 1330-1337] | |
Yan LL, Qin YJ, Yan XW, et al. Development of microsatellite markers in Ruditapes philippinarum using next-generation sequencing. Acta Ecologica Sinica, 2015, 35(05): 1573-1580 [闫路路, 秦艳杰, 闫喜武, 等. 基于转录组平台的蛤仔微卫星标记筛选. 生态学报, 2015, 35(05): 1573-1580] | |
Yan XW, Yu ZF, Qin YJ, et al. Development of EST-SSRs markers and analysis of genetic diversities among different geographical populations of Manila clam Ruditapes philippinarum. Acta Ecologica Sinica, 2011, 31(15): 4190-4198 [闫喜武, 虞志飞, 秦艳杰, 等. 菲律宾蛤仔EST-SSRs标记开发及不同地理群体遗传多样性. 生态学报, 2011, 31(15): 4190-4198] | |
Yasuda N, Nagai S, Yamaguchi S, et al. Development of microsatellite markers for the Manila clam ruditapes philippinarum. Molelar Ecology Notes, 2007, 7(1): 43-45 | |
Zhang XY, Zhang XJ, Zhao C, et al. The development of BAC-end sequence-based microsatellite markers and analysis on population genetic diversity in Zhikong scallop (Chlamys farreri). Journal of Fisheries of China, 2012, 36(6): 815-824 [张秀英, 张晓军, 赵翠, 等. 栉孔扇贝BES-SSR的开发及遗传多样性分析. 水产学报, 2012, 36(6): 815-824] | |
Zhou XL, Zhu QH, Dong YH, et al. Development and comparative study of genomic-SSR and EST-SSR in Tegillarca granosa. Oceanologia Et Limnolgia Sinica, 2013, 44(2): 467-475 DOI:10.11693/hyhz201302032032 [周小龙, 朱靖华, 董迎辉, 等. 泥蚶 (Tegillarca granosa)基因组SSR和EST-SSR的开发及比较研究. 海洋与湖沼, 2013, 44(2): 467-475] |