对虾养殖产业产生了巨大的经济效益，然而，急性肝胰腺坏死病等细菌性病害暴发，严重威胁对虾养殖产业(张宝存等, 2012; FAO, 2013)。目前，对致病微生物的研究还主要依赖于可培养的微生物(阎冰等, 2004)，然而，迄今为止，在实验室条件下超过99%的微生物还无法被分离及纯培养(Kellenberger, 2001)，因此采用传统培养技术调查养殖系统中的微生物群落会造成片面的认识，许多未知疾病的致病原也尚未被发现。1998年，宏基因组(Metagenomics)的概念首次被提出(Handelsman et al, 1998)，它是将微生物生态群落中所有微生物的基因组看作一个整体，通过研究这个整体中物种的组成、丰度和功能来探索微生物群落及其生境之间的相互关系(Handelsman et al, 1998; 叶雷等, 2016)。与传统研究方法相比，基于宏基因组的高通量测序技术具有一系列优点：首先，不需要依赖培养技术对微生物进行分离；其次，可利用较少的样本量检测到低丰度的微生物；而且可以同时对多个样本进行分析，从而更加快速和完整地反映样品中微生物的群落特征(Handelsman et al, 1998; 孙欣等, 2013; Williams et al, 2014)。因此，近几年来，越来越多的研究者采用高通量测序技术来进行未知及复杂疾病的病原检测(Alavandi et al, 2012; 浦绍艳等, 2014)。采用Ion Torrent PGM平台，研究者对未知病因足部溃烂病人样品的16S rDNA基因V1~V2高变区进行测序，发现了一部分与足部慢性溃疡有关的细菌(刘文丽等, 2016)。Johnston等(2017)研究牛呼吸道疾病(BRD)的肺部组织样品，通过Illumina Miseq测序16S rDNA基因的V3~V4区，揭示了肺和淋巴结中的不同优势菌组成，并发现导致牛呼吸道疾病的病原菌可能从属于纤毛菌科(Leptotrichiaceae)中一个新的菌属。尽管高通量测序在人体及陆生动物疾病诊断中已经得到应用，但在水生动物疾病研究中还鲜有报道。

2017年2月，在浙江某对虾育苗场了解到有2个苗池的凡纳滨对虾(Litopenaeus vannamei)溞状幼体发生未知病因的疾病，养殖池水体的理化指标均正常，但幼体出现摄食少、活动力差和死亡等情况。在2个苗池分别采集病虾样品进行多种病原检测，并用组织病理学、微生物分离鉴定和微生物组学方法分析了各样品的潜在病原、病理和细菌菌群结构，为该病例的发病原因分析提供线索。

凡纳滨对虾的溞状幼体样品于2017年2月取自浙江某育苗场，现场了解育苗情况及病害情况后，取2个患病苗池的幼体各0.1，分别标记为20170222002 (溞状幼体3期, Z3)和20170222003(溞状幼体1期, Z1)，使用Davidson’s AFA (DAFA) (Bell et al, 1988)和3倍体积95%乙醇保存(陈大菾等, 2015)，另取一部分样品匀浆后接种于2216E液体培养基中。样品运回实验室后，95%乙醇保存样品，于–80℃冰箱备用。

固定24 h后，将DAFA固定的对虾组织更换于70%酒精中保存，并进行梯度脱水、浸蜡、透明、石蜡包埋和切片。切片经苏木精-伊红(HE)染色制片(Bell et al, 1988)，于光学显微镜(Nikon E800)下观察。

将2216E液体培养基保存的菌液，划线接种在新鲜的2216E固体培养基平板上，28℃过夜培养。之后根据平板上菌落形态加以区分，从形态一致、数量较多的菌落中随机选取进行保种，并采用16S rRNA基因对优势菌株进行PCR扩增并测序。进一步采用弧菌gyrB基因的特异引物(5'-GAGAACCCGACAGAA GCGAAG-3'和5'-CCTAGTGCGGTGATCAGTGTTG- 3') (Wei et al, 2014)对待鉴定菌株进行进一步比对。MEGA6软件用于gyrB基因的系统进化树构建，并进行1000次的Bootstraps重复检验。

分离并鉴定出的细菌采用悉生卤虫(Artemia)幼体进行致病力检测。分别将各受试菌于28℃下震荡培养至OD_{600 nm}=1备用。取50 ml无菌玻璃瓶，加入10 ml灭菌海水及20只悉生卤虫幼体，并加入已制备的菌液至终浓度为10⁷ CFU/ml进行攻毒。空白对照组未加入细菌，阴性对照组加入相同浓度的徐氏弧菌(Vibrio xuii)。每组实验设置3个重复。28℃下光照培养48 h后，统计并计算不同实验组卤虫的存活率。

用研磨珠将2管溞状幼体组织匀浆，取60 µl样品，8000 r/min离心5 min，弃上清液，在室温下放置10 min，使管中的酒精充分挥发。使用TIANamp海洋动物组织基因组试剂盒(天根, 北京)提取DNA，RNAiso Plus (TaKaRa, 大连)提取总RNA。每管溞状幼体3个重复。

参照OIE《水生动物疾病诊断手册》(OIE, 2017)的标准检测方法分别筛查白斑综合征病毒(White spot syndrome virus, WSSV)、传染性皮下及造血组织坏死病病毒(Infectious hypodermal and hematopoietic necrosis virus, IHHNV)、急性肝胰腺坏死病副溶血弧菌(Acute hepatopancreatic necrosis disease caused by Vibrio parahaemolyticus, Vp_AHPND)、桃拉综合征病毒(Taura syndrome virus, TSV)、传染性肌坏死病毒(Infectious myonecrosis virus, IMNV)及黄头病毒(Yellow head virus, YHV)；并参考相关文献检测虾肝肠胞虫(Microsporidian Enterocytozoon hepatopenaei, EHP) (Jaroenlak et al, 2016)、偷死野田村病毒(Covert mortality nodavirus, CMNV) (Zhang et al, 2014)及虾血细胞虹彩病毒(Shrimp hemocyte iridescent virus, SHIV) (Qiu et al, 2017)。引物序列详见表 1。

表 1(Tab.1)

表 1 常见已知对虾病原PCR检测的引物 Tab.1 Primers of PCR detection for usual known pathogens of penaeid shrimp 检测项目 Detection item 引物名称 Primer name 序列 Sequence (5'~3') 扩增长度 Product size (bp) PCR/ Nested-PCR 文献 Reference 质控 Control 143F TGCCTTATCAGCTNTCGATTGTAG 848 DNA内参 Internal reference DNA OIE 145R TTCAGNTTTGCAACCATACTTCCC WSSV 146F1 ACTACTAACTTCAGCCTATCTAG 1447 第一轮 First PCR OIE 146R1 TAATGCGGGTGTAATGTTCTTACGA 146F2 GTAACTGCCCCTTCCATCTCCA 941 第二轮 Second PC 146R2 TACGGCAGCTGCTGCACCTTGT IHHNV IHHNV-389F CGGAACACAACCCGACTTTA 389 通用型 Common form OIE IHHNV-389R GGCCAAGACCAAAATACGAA IHHNV-309F TCCAACACTTAGTCAAAACCAA 309 感染型 Infectious form IHHNV-309R TGTCTGCTACGATGATTATCCA EHP SWP_1F TTGCAGAGTGTTGTTAAGGGTTT 514 第一轮 First PCR Jaroenlak 等(2016) SWP_1R CACGATGTGTCTTTGCAATTTTC SWP_2F TTGGCGGCACAATTCTCAAACA 148 第二轮 Second PC SWP_2R GCTGTTTGTCTCCAACTGTATTTGA VpAHPND AP4-F1 ATGAGTAACAATATAAAACATGAAAC 1269 第一轮 First PCR OIE AP4-R1 ACGATTTCGACGTTCCCCAA AP4-F2 TTGAGAATACGGGACGTGGG 230 第二轮 Second PC AP4-R2 GTTAGTCATGTGAGCACCTTC SHIV IV-F GGGCGGGAGATGGTGTTAGAT 457 第一轮 First PCR Qiu等(2017) IV-R TCGTTTCGGTACGAAGATGTA IV-NF CGGGAAACGATTCGTATTGGG 129 第二轮 Second PC IV-NR TTGCTTGATCGGCATCCTTGA TSV TSV-9992F AAGTAGACAGCCGCGCTT 231 OIE TSV-9195R TCAATGAGAGCTTGGTCC YHV YHV-GY5 GAGCTGGAATTCAGTGAGAGAACA / 反转录Reverse transcription OIE YHV-GY1 GACATCACTCCAGACAACATCTG 794 第一轮 First PCR YHV-GY4 GTGAAGTCCATGTGTGTGAGACG YHV-GY2 CATCTGTCCAGAAGGCGTCTATGA YHV:277 GAV:406 第二轮 Second PC YHV-Y3 ACGCTCTGTGACAAGCATGAAGTT YHV-G6 GTAGTAGAGACGAGTGACACCTAT IMNV IMNV 4587F CGACGCTGCTAACCATACAA 328 第一轮 First PCR OIE IMNV 4914R ACTCGGCTGTTCGATCAAGT IMNV 4725NF GGCACATGCTCAGAGACA 139 第二轮 Second PC IMNV 4863NR AGCGCTGAGTCCAGTCTTG CMNV CMNV-7F1 AAATACGGCGATGACG 619 第一轮 First PCR Zhang等(2014) CMNV-7R1 ACGAAGTGCCCACAGAC CMNV-7F2 CACAACCGAGTCAAACC 165 第二轮 Second PC CMNV-7R2 GCGTAAACAGCGAAGG

表 1 常见已知对虾病原PCR检测的引物 Tab.1 Primers of PCR detection for usual known pathogens of penaeid shrimp

将提取的基因组DNA作为模板，扩增16S rDNA序列的V3~V4可变区，引物序列为常规引物341F(5'- CCTACGGGNGGCWGCAG-3')和805R(5'-GACTAC HVGGGTATCTAATCC-3')。PCR反应体系为30 μl，含2×Phusion Master Mix (Thermo Scientific, 美国) 15 μl、2 μmol/L引物混合物3 μl和1 ng/μl gDNA 10 μl。经98℃预变性1 min；98℃ 10 s、50℃ 30 s和72℃ 30 s，30个循环；72℃延伸5 min。每个样品取等量PCR产物混合，用2%琼脂糖凝胶电泳回收目的条带，用geneJET胶回收试剂盒(Thermo Fisher Scientific, 美国)回收产物。使用TruSeq^® DNA PCR-Free Sample Preparation Kit (Illumina, 美国)进行文库构建，合格的文库使用HiSeq2500 PE250进行上机测序(诺禾致源公司, 北京)。

利用Quantitative Insights Into Microbial Ecology (QIIME, v1.7.0) (Caporaso et al, 2010)对拼接得到的Raw Tags进行严格的质控和去除嵌合体，从而得到高质量的有效数据(Effective tags)。使用Uparse (v7.0.1001) (Edgar, 2013)在97%的相似性水平对有效序列聚类到分类操作单元(Operational taxonomic units, OTU)，选取每个OTU中丰度最高的序列作为代表序列，对OTUs代表序列进行物种注释，用Mothur方法(Schloss et al, 2009)与SILVA (Wang et al, 2007)的SSU rRNA数据库(Quast et al, 2013)进行物种注释分析(设定阈值为0.8~1)，获得分类学信息并分别在界、门、纲、目、科、属和种等各个分类水平统计各样本的群落组成。

使用QIIME (v1.7.0)计算alpha多样性指数(Observed-species, Chao1, Shannon, Simpson, ACE, Goods-coverage)，选用T-test检验比较2组样品的差异。LEfSe分析使用LEfSe软件展示了2组样品之间具有统计学差异的物种[默认设置Linear discriminant analysis (LDA) Score的筛选值为4]。

2批虾苗均来自进口某品牌的无特定病原(SPF)亲虾产卵所孵化的幼体，亲虾引进时经检疫部门检测合格。虾卵经孵化和无节幼体培育，进入溞状幼体期后均只使用某品牌虾片，该批虾片在4℃~10℃的冷库已存放接近6个月，辅以螺旋藻粉、黑粒、车元等添加剂配制的饲料喂养，未投喂单细胞藻类。采样时，虾苗分别处于溞状幼体3期(Z3)和溞状幼体1期(Z1)，其中，Z3出现饲料摄食减少、虾苗活动能力差、虾苗批量死亡的现象，取样后因为死亡率高而全池销毁；Z1出现虾苗活动力下降、饲料摄食量降低、拖便呈细丝状或偏少的情况，后期在变态中损失较大。

对2批虾苗样品进行组织切片，结果显示，均没有可辨认的常见已知病原感染的组织病理症状，但在Z3肝胰腺小管细胞内的脂滴中观察到大量棕黄色的不明团块，Z1肝胰腺小管和部分细胞内也出现棕色颗粒(图 1)。

图 1(Fig. 1)

图 1 病理组织观察 Fig.1 Histopathological features of fixed L. vannamei zoea samples A：溞状幼体3期(Z3)样品；B：溞状幼体1期(Z1)样品 A: zoea stage Ⅲ (Z3); B: zoea stage Ⅰ (Z1)

样品分别取自同一个养殖场的2个发病池塘，实验室分子检测结果见表 2。如表 2所示，2份样品均未检出常见的已知对虾病原，对近几年导致重大对虾疾病的EHP、Vp_AHPND和SHIV等进行检测，结果也均为阴性。

表 2(Tab.2)

表 2 对样品进行已知病原的检测结果 Tab.2 Detection for known pathogens in zoea samples 样品Sample WSSV IHHNV EHP VpAHPND SHIV TSV YHV IMNV CMNV S1(Z3) N N N N N N N N N S2(Z1) N N N N N N N N N 注：N表示阴性 Note: N means negative result

表 2 对样品进行已知病原的检测结果 Tab.2 Detection for known pathogens in zoea samples

根据16S rDNA的序列比对结果，进一步采用弧菌属特异引物对待鉴定菌株进行测序比对，最终确定该菌株为溶藻弧菌(Vibrio alginolyticus) (图 2)。使用悉生卤虫分别对2个池塘分离的溶藻弧菌致病力进行评估，结果显示，2份样品中分离出的溶藻弧菌均对卤虫具有致病性，且Z3期样品分离株致病性较强(P < 0.05) (表 3)。

图 1(Fig. 1)

图 2 基于Neighbor-Joining方法的gyrB基因系统进化树 Fig.2 Phylogenetic analysis of gyrB gene using neighbor joining tree

表 3(Tab.3)

表 3 不同溶藻弧菌分离株对卤虫的致病力检测 Tab.3 Survival of brine shrimp larvae challenged with different V. alginolyticus isolates 菌株 Bacteria strains 卤虫存活率 Survival rate of Artimia (%) 空白对照 Control 100±0 Vibrio xuii1 100±0 Vibrio alginolyticus (Z3) 2 58±8 Vibrio alginolyticus (Z1) 3 83±8 注：1：V. xuii为阴性对照；2：从Z3期样品中分离出的V. alginolyticus；3：从Z1期样品中分离出的V. alginolyticus Note: 1: V. xuii is negative control; 2: V. alginolyticus was isolated from Z3 sample; 3: V. alginolyticus was isolated from Z1 sample

表 3 不同溶藻弧菌分离株对卤虫的致病力检测 Tab.3 Survival of brine shrimp larvae challenged with different V. alginolyticus isolates

以提取的总菌群基因组DNA为模板，经PCR扩增所得16S rDNA的V3~V4区目的片段条带清晰(图 3)，可以满足后续测序实验的要求。

图 1(Fig. 1)

图 3 6个样品的PCR扩增产物电泳 Fig.3 PCR products of six samples M1：100 bp分子量标准; 1~6分别为6份样品的PCR产物；CK：空白对照 M1: 100 bp ladder; 1~6: Six PCR products; CK: Blank control

上述所得V3~V4区的产物通过高通量测序，共获得43330条有效序列，以97%的一致性(Identity)将这些序列聚类成为平均280个OTUs。

经统计分析获得序列的α-多样性如表 4所示。α-多样性是反映样品内微生物群落的丰富度和均匀度的一个综合指标。评估丰富度的指标主要为种类数目(Observed-species)、测序深度指数(Goods-coverage)，Chao1指数和ACE指数；而群落中个体分配上的均匀性，即多样性，主要包括Shannon指数和Simpson指数，通常这2个值越大意味着群落多样性越高。Z3期(S1)样品群落丰度指数Shannon、Simpson和Chao1略高于Z1期(S2)样品，而ACE指数略低于Z1期样品。比较2个时期细菌群落的α-多样性指数可知，Z3期的细菌群落多样性和丰度均高于Z1期(表 4)。T-test检验结果显示，2组样品的细菌群落的Observed-species、Chao1、ACE和Goods-coverage指数均无显著差异(P > 0.05)；而Shannon和Simpson指数则差异显著(P < 0.05)。

表 4(Tab.4)

表 4 2组虾苗中总细菌菌群的alpha多样性 Tab.4 Alpha-diversity indices of bacterial communities of samples under two zoea stages Sample name Observed-species Shannon Simpson Chao1 ACE Goods-coverage S1(Z3) 252±10 3.27±0.13* 0.76±0.01* 272.95±20.31 274.66±15.64 0.999 S2(Z1) 243±22 2.82±0.06* 0.70±0.00* 271.69±18.27 281.25±18.67 0.999 注：*表示差异显著(P < 0.05) Note: * represent significant difference (P < 0.05)

表 4 2组虾苗中总细菌菌群的alpha多样性 Tab.4 Alpha-diversity indices of bacterial communities of samples under two zoea stages

根据物种注释结果，选取每个样品和分组在各分类水平上最大丰度排名前10的物种，生成物种相对丰度柱型累加图(图 4)显示，2组溞状幼体在菌群门水平上的组成种类差异不大，总菌群的优势门主要包括变形菌门(Proteobacteria)、拟杆菌门(Bacteroidetes)和厚壁菌门(Firmicutes)。Z3期的平均相对丰度分别为89.5%、8.9%和1.3%，合计占总细菌序列数的99.7%；Z1期的平均相对丰度为72.1%、26.9%和0.7%，合计占总细菌序列数的99.7%。Z3期溞状幼体中变形菌门和厚壁菌门的相对丰度显著高于Z1期，但Z1期中拟杆菌门的相对丰度高于Z3期的样品。

图 1(Fig. 1)

图 4 各个样品(A)和分组样品(B)门水平上的物种相对丰度 Fig.4 Relative abundance of species in each sample (A) and each group (B) at phylum level

在属水平上的统计分析结果表明(图 5)，Z3期样品中相对丰度最高的是弧菌属(Vibrio, 74.3%)，相对丰度 > 1%的包括发光杆菌属(Photobacterium, 2.9%)、欧文维克菌属(Owenweeksia, 1.9%)、黏着杆菌属(Tenacibaculum, 1.4%)、海洋螺菌属(Oceanospirillum, 1.4%)、深海短杆菌属(Thalassotalea, 1.1%)和其他未分类菌(others, 16.1%)；Z1期样品中相对丰度高的除了弧菌属(60.5%)，还包括黏着杆菌属(21.9%)，相对丰度 > 1%的则是褐指藻杆菌属(Phaeodactylibacter, 1.6%)、姜氏菌属(Kangiella, 1.2%)和其他未分类菌(others, 13.1%)。由于此研究仅是对总的16S rDNA序列的V3~V4可变区进行扩增和高通量测序，因此，只能准确到属的水平，而非物种水平。

图 1(Fig. 1)

图 5 各个样品(A)和分组样品(B)属水平上的物种相对丰度 Fig.5 Relative abundance of species in each sample (A) and each group (B) at genus level

从LDA值分布柱状图(图 6A)可以看出，在属的水平上，发光杆菌属、弧菌属和黏着杆菌属是2组溞状幼体样品中差异显著的物种。在Z3期样品中，光合杆菌属和弧菌属的LDA值均接近4.8；而对于Z1期样品，在黏着杆菌属的LDA值接近4.8。由进化分支图（图 6B）显示，弧菌科(Vibrionaceae)-弧菌目(Vibrionales)、侏囊菌科(Nannocystaceae)-黏球菌目(Myxococcales)和交替单胞菌科(Alteromonadaceae)均属于变形菌门；而黄杆菌科(Flavobacteriaceae)-黄杆菌目(Flavobacteriales)-黄杆菌纲(Flavobacteriia)属于拟杆菌门。

图 1(Fig. 1)

图 6 LDA值分布柱状图(A)和进化分支图(B) Fig.6 Histogram of the LDA scores of biomarker (A) and taxonomic representations of microbiome from two group of samples (B) LDA值展示2组样品中丰度差异显著的物种(LDA Score > 4)，柱状图的长度代表差异物种的影响大小。进化分支图由内至外辐射的圆圈代表了由门到种的分类级别。在不同分类级别上的每一个小圆圈代表该水平下的一个分类，小圆圈直径大小与相对丰度大小呈正比。红色圆圈代表Z3期样品(S1)中差异显著的物种，绿色圆圈代表Z1期样品(S2)中差异显著的物种，黄色圆圈代表无显著差异的物种 LDA score (> 4) represents the significantly differential abundance in the microbial taxa between samples. The biomarkers from samples were highlighted in the cladogram. From the innermost to outmost, each cycle represents the phylum, class, order, family, genus and species level. Each dot represents a taxon, and its diameter positively correlates with the abundance of the corresponding taxon. The red and green colored dots indicate the biomarkers from Z3 (S1) and Z1(S2) samples, respectively. The yellow dot represents the taxa with nonsignificant changes between groups

在对虾的育苗期，对虾先由无节幼体变态发育为溞状幼体，溞状幼体分为3期，在此阶段发育至具有完整口器和消化器官，开始摄食。在对虾育苗生产中，溞状期的培育是成败的关键，幼体营养需求的满足能显著影响其变态时间(李绍彬等, 2000)，以虾片为饲料主成分时，不同品牌的虾片对育苗效果也可能有显著影响(杨育凯等, 2017)。本研究所针对的育苗场只采用了某品牌的虾片为饲料主成分，且该批虾片在育苗场的4℃~10℃的冷库存放接近半年。采用该虾片投喂的溞状幼体出现了明显的摄食量下降、活力减弱和死亡问题，其中，Z3期的育苗池发病比Z1期的育苗池表现更严重，在采样后Z3期的育苗池因为存活率太低而销毁。组织病理观察发现，Z3的样品在肝胰腺细胞内出现大量不明的棕色团块，疑似饲料沉积物。因此，初步怀疑可能是因为虾片品牌或存储时间过长，发生酸败或其他问题影响了虾片质量，导致其营养未能有效利用，产生细胞内沉积，影响了虾苗的抗病力和存活率(梁萌青等, 1996; Laohabanjong, 2009)，而Z1期可能刚开始摄食，受饲料的影响刚开始出现，尚不如Z3严重。

通过分子学手段对对虾已知的多种病原进行检测，均为阴性，说明这次溞状幼体期的病害不是这些感染性病原所致。通过2216E培养基的培养，从Z3和Z1幼体中均分离到溶藻弧菌，2株溶藻弧菌对悉生卤虫幼体表现出致病力，表明该菌存在一定的毒力。研究表明，包括溶藻弧菌在内的多种弧菌容易侵染溞状幼体，且短时间内能导致全部死亡(王景明等, 1992)，Hamza等(2018)研究也发现，从发病对虾样品中分离出的溶藻弧菌可使悉生卤虫幼体的死亡率达到97%。然而溶藻弧菌的来源尚不明确，此菌不存在芽孢形式，在干粉饲料制作中如果有污染，其存活的时间也十分有限，因此，饲料中存在溶藻弧菌的可能性很小。

宏基因组学方法为未知疾病的病因及其潜在致病微生物分析提供了更全面的微生物组信息。由于大多数微生物在常规的培养基上无法生长，而且采用传统平板培养基分离出的微生物具有营养偏好性，因此，得到的结果无法全面地体现菌群组成的真实情况。高通量测序无需培养，能全面地反映样品的微生物多样性。目前，已有不少对虾体内和养殖水体中菌群组成的研究，但发病虾苗中菌群多样性研究的报道较少。本研究检测到发病对虾溞状幼体主要菌群与报道的健康凡纳滨对虾菌群类似，在门水平均包括变形菌门和拟杆菌门(Rungrassamee et al, 2013、2014; 吴金凤等, 2016; 唐阳等, 2017)，但在属水平上，发病对虾溞状幼体样品中弧菌属和黏着杆菌属相对丰度较高。采用平板培养分离出的优势菌亦为弧菌属的溶藻弧菌，且使用悉生卤虫检验了此菌的致病力，推断弧菌可能是导致这些虾苗发病的原因。有研究显示，加入有益菌(如蜡样芽孢杆菌Bacillus cereus)可以抑制弧菌等有害菌的生长(唐阳等, 2017)，生产中也观察到向溞状幼体期的水体投放益生菌(如交替投放芽孢杆菌和乳酸菌制剂)，可提高溞状幼体期的变态率和存活率(林黑着等, 2015)。

黏着杆菌属也是海洋环境中常见的一类致病细菌(Pridgeon et al, 2012)，最早发现可侵染鱼类，比如能导致舌鳎和大菱鲆发生黏着杆菌病(Tenacibaculosis)的海洋黏着杆菌(Tenacibaculum maritimum) [曾用名为海洋屈挠杆菌(Flexibacter maritimus)] (Vilar et al, 2012; Avendaño-herrera et al, 2006)。巴西学者发现，海洋黏着杆菌能造成凡纳滨对虾苗期，尤其是仔虾期(Postlarvae)大规模死亡，同时还伴有身体发黑、活力差和吃料少等病症(Mouriño et al, 2008)；但也有研究表明，黏着杆菌在正常的对虾中也存在(张欢欢等, 2016; 唐阳等, 2017)，但丰度较低。在本研究的Z1期样品中黏着杆菌的丰度仅次于弧菌，此类细菌也可能直接或者间接导致这批凡纳滨对虾溞状幼体的发病。

虾类病害诊断的目的是确定病害种类、掌握病因和查明病原。但与医学疾病诊断相比，针对病例进行详细剖析的报道少，诊断工作中遇到的多种多样的情况难以找到判断的依据，因此，病例研究的报道是提高对各种病害诊断的准确性的重要支持。本研究首先对对虾育苗期的未知病例进行了详细的背景描述和症状观察，再采用组织病理学、病原检测、分离培养并结合宏基因组测定方法进行分析，报告全面的背景情况和分析数据信息，能为将来该类病害的诊断提供参考。目前，目标基因的宏基因组测序成本降低，此技术能提供微生物组的种属和数量的更全面信息，在疾病诊断方面具有重要意义，因此，对于病因复杂的疾病，应考虑增加宏基因组分析样品的取样，以备为发病宿主的微生物群落分析提供材料。