脆江蓠(Gracilaria chouae)是我国特有的暖水种经济红藻，具有较高的研究价值。前期研究表明，短期高盐海水浸泡脆江蓠使其藻体软化，用于实际夹苗生产的前处理方法是可行的，该方法夹苗牢固，对藻体损伤小，且可在短期内恢复正常。但高盐度诱发活性氧积累会造成海藻损伤，而海藻抗氧化系统清除活性氧能力在海藻耐盐能力中起着重要作用。对高等植物研究发现，盐胁迫可增加植物体内活性氧的产生，造成氧化胁迫(Heidari et al, 2011)。在大型红藻的研究中也发现，盐度胁迫会引起藻体内抗氧化酶活性的升高(李晓蕾等, 2019；Kumar et al, 2010)。抗氧化酶活性与藻类的抗逆性之间有着重要的相关性(Dummermuth et al, 2003)。在系统进化中，藻类进化出一套自由基清除系统来去除体内过多的氧自由基，抵抗氧化胁迫，从而避免藻体损伤。植物的抗氧化系统包括超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化物酶(POD)、过氧化氢酶(CAT)等酶促抗氧化系统和包括抗坏血酸、类胡萝卜素和脯氨酸等在内的非酶促抗氧化系统。

通常盐碱胁迫会减弱植物的光合作用，而藻类的生长发育及产量与光合作用密切相关(徐涵等, 2019)。高盐胁迫下，植物细胞发生水分亏缺，光合作用能力与叶绿体内的光合酶活性有关(Kaiser et al, 2015)。研究表明，细胞在缺水条件下，光合作用的下调与抗氧化酶的活性有关，此时，细胞内活性氧自由基(ROS)大量积累，抗氧化系统作用减弱，造成细胞膜脂过氧化损伤，从而导致了植物光合碳同化能力下降(闻志彬等, 2015)。植物光合碳同化途径可以随环境改变发生适应性变化(Hibberd et al, 2004)，大型海藻的光合碳代谢除了C₃途径外，通常还同时存在不一定完整的C₄途径(芦笛, 2013)。作为C₃途径的补充，C₄植物具有高光合效率、低CO₂补偿点、几乎没有光呼吸等特点(李卫华等, 1999)，尤其在干旱、盐碱胁迫下，C₄植物具有明显的生长优势及水分和营养利用率(Hatch, 1987)。

目前，有关盐度对脆江蓠影响的研究甚少，主要为低盐对脆江蓠生长、光合色素含量及抗氧化酶活性等影响方面的少数研究(金玉林等, 2012; 解修俊等, 2014)。但高盐胁迫对脆江蓠影响的研究还未见报道。本研究通过测定不同高盐度和不同处理时间对脆江蓠抗氧化酶以及光合作用相关酶含量的变化，探讨高盐胁迫对脆江蓠光合作用相关酶活性的影响以及脆江蓠抗氧化酶活性对短期盐度胁迫的调控作用，为大型藻类耐盐机制的研究提供数据参考。

脆江蓠取自山东省青岛市城阳水产批发市场，低温运回实验室。选取生长状况良好，形态一致的藻体，灭菌海水反复冲洗至表面无杂质，GXZ智能光照培养箱(宁波江南仪器厂)预培养7 d。培养海水取自胶州湾养殖区(盐度为32, pH为7.99, 无机氮浓度为56.9 μmol/dm³, 无机磷浓度为2.16 μmol/dm³)，1 L培养液放入1 g藻体，温度为(20±1)℃，光照强度为(70±10) μmol/m²·s，光照周期为12 L:12 D。每天更换一次培养液。

使用NaCl溶解于灭菌自然海水的方法，调节水体盐度至40、45、50、55和60。将脆江蓠浸泡于上述盐度海水中，光照培养箱培养(培养条件与暂养一致) 0.5 h后，置于自然灭菌海水中恢复12、24 h，每个处理设置3个重复。选取健康、生长一致藻体，无菌海水冲洗3次并吸干表面水分，进行酶活测定实验，自然海水作为对照组。

脆江蓠SOD、POD、CAT和丙二醛(MDA)活性使用南京建成酶活试剂盒测定，具体方法参见试剂盒使用说明书。

脆江蓠1, 5-二磷酸核酮糖羧化酶(Rubisco)活性使用索莱宝酶活试剂盒测定，碳酸酐酶(CA)活性使用Melson检测试剂盒测定，具体方法参见试剂盒使用说明书。

使用Excel 2013进行数据处理；采用SPSS 17.0软件进行单因素方差分析(One-way ANOVA)，使用Duncan法进行多重比较，P < 0.05为显著标准。

如图 1~图 4所示，盐度胁迫显著影响脆江蓠抗氧化酶活性及MDA含量(P < 0.05)。高盐处理0.5 h后，SOD活性随盐度升高，呈先降低后升高趋势(P < 0.05)，盐度为55时达最大值。POD活性随盐度升高波动变化(P < 0.05)。CAT活性随盐度升高略有降低，但与对照组间差异不显著(P > 0.05)。MDA含量随盐度升高呈先降低后升高(P < 0.01)，盐度为40时含量最低，盐度为55时达最大值。

图 1(Fig. 1)

图 1 盐度对脆江蓠超氧化物歧化酶活性的影响 Fig.1 The effect of salinity on SOD activity of G. chouae 不同小写字母表示同一处理时间下不同盐度处理组间 差异显著(P < 0.05)，不同大写字母表示同一盐度处理组 在不同处理时间下差异显著(P < 0.05)。下同 Different lowercases indicate significant difference (P < 0.05) among different groups at the same time. Different uppercases lowercases indicate significant difference (P < 0.05) at different time point of the same group. The same as below

图 1(Fig. 1)

图 2 盐度对脆江蓠过氧化物酶活性的影响 Fig.2 The effect of salinity on POD activity of G. chouae

图 1(Fig. 1)

图 3 盐度对脆江蓠过氧化氢酶活性的影响 Fig.3 The effect of salinity on CAT activity of G. chouae

图 1(Fig. 1)

图 4 盐度对脆江蓠丙二醛含量的影响 Fig.4 The effect of salinity on MDA content of G. chouae

恢复12 h后，脆江蓠抗氧化酶系统活性变化见图 1~图 4，随盐度的升高，SOD活性逐渐升高(P < 0.01)(图 1)，盐度为55时含量最高。POD活性随盐度升高呈与高盐处理0.5 h相反的趋势波动变化(P < 0.05)(图 2)。CAT活性随盐度升高逐渐降低(P < 0.01)(图 3)，盐度为55时含量最低。MDA含量变化趋势与盐处理0.5 h相同(P < 0.01)，较盐处理0.5 h含量低(图 4)。

胁迫去除后，随恢复时间的增加，藻体内抗氧化酶活性显著升高(P < 0.01)，MDA含量明显降低(图 1~ 图 4)。SOD活性随恢复时间的增加显著升高(P < 0.01)，恢复24 h后，随盐度的增加显著升高(P < 0.01)。POD活性随恢复时间的增加而升高(P < 0.01)，恢复24 h后，POD活性波动变化总体呈升高趋势(P < 0.05)，盐度为55时达最大值。除盐度40组外，各盐度处理组CAT活性随恢复时间的增加而升高，盐度为50和55时最为显著(P < 0.01)，且随恢复时间的增加而升高。MDA含量与盐处理0.5 h相比明显降低。

盐处理0.5 h及恢复24 h后脆江蓠Rubisco活性变化见图 5。盐处理0.5 h后，随着盐度增加，Rubisco活性呈先增加后减少的趋势(P < 0.01)。经过24 h恢复，盐度为40、50及60组Rubisco活性显著增加(P < 0.01)。

图 1(Fig. 1)

图 5 盐度对脆江蓠二磷酸核酮糖羧化酶活性的影响 Fig.5 The effect of salinity on Rubisco activity of G. chouae

盐处理0.5 h后(图 6)，盐度55组CA含量显著低于对照组(P < 0.05)，其余各处理组与对照组相比CA含量有所增加。恢复24 h后，与盐处理0.5 h相比，盐度45、50和60组中CA含量开始降低，盐度为55组CA含量显著增加(P < 0.05)。

图 1(Fig. 1)

图 6 盐度对脆江蓠碳酸酐酶含量的影响 Fig.6 The effect of salinity on CA content of G. chouae

高渗透压胁迫下，在不同光、重金属等环境胁迫，大型藻类藻体会发生快速、强烈但短期的活性氧(ROS)猝发(Dring, 2005)。ROS的大量积累，会引起植物膜结构和功能的破坏、DNA突变及蛋白质降解(Bowler et al, 1992)等生物损伤。大型藻类在逆境胁迫下进化出一套自由基清除系统，通过增加细胞内抗氧化物、SOD、POD、CAT等抗氧化酶的含量清除过多的活性氧，减少细胞损伤(Dring, 2005)。本研究中，盐度处理0.5 h，藻体SOD活性在盐度为45以后随盐度增加而升高，盐度为55时达最大值，这与金玉林(2012)的研究结果相似。SOD是抗氧化酶抵御不良环境的第一道防线，其活性增加是对体内氧自由基增加的应急解毒措施(罗广华等, 1987)，在一定盐度胁迫范围内，SOD活性可随胁迫强度的增加而升高，迅速清除ROS，从而达到对机体的保护作用。POD对环境变化尤其敏感(刘晓培等, 2012)，但盐度胁迫需要依赖细胞的完整性才能诱导POD酶活性(柯德森等, 2006)。本研究中，POD活性随盐度增加呈波动变化，推测其原因可能是，藻体内积累的活性氧造成细胞膜结构和功能的破坏，POD不能完全发挥作用而导致的。CAT活性随盐度增加逐渐降低，可能是由于CAT酶蛋白更易受到损伤，这与高NaCl可引起螺旋藻CAT失活的结果相似(刘志礼等, 1998)。

当机体自由基清除系统不能及时清除大量ROS时，会产生大量的脂质过氧化产物MDA，其极易与细胞内各种成分反应，从而引起细胞膜及胞内酶的严重损伤，MDA是衡量脂质损害程度的重要指标(王爱国等, 1986)。本研究中，盐处理0.5 h，盐度不超过45时，脆江蓠体内MDA含量随盐度升高呈先减少后增加的趋势，说明在一定范围内升高盐度，脆江蓠体内自由基清除系统能有效发挥作用，降低MDA含量。当盐度继续增加，机体来不及清除体内过多ROS，MDA含量随盐度增加而升高，与冯琛等(2004)对条斑紫菜的研究结果相一致。

盐度为60时，脆江蓠藻体SOD、POD以及CAT活性都显著降低。可能是藻体受到极端胁迫时，破坏了自由基清除系统，对生物体的保护功能降低(王建华等, 1989)。当胁迫停止，随恢复时间的增加，藻体SOD、POD及CAT活性明显升高，MDA活性显著降低，表明胁迫去除后，抗氧化酶类活性增加，藻体保护系统又逐步恢复作用，大量清除ROS，藻体逐渐恢复。藻类抗氧化酶系统和抗逆性之间存在着重要的联系(Dummermuth et al, 2003)，抗氧化酶系统或许可以作为藻类抗逆的指标，但对藻类抗氧化酶系统抵御盐度胁迫机制的了解还不够，还需进一步研究。

盐碱胁迫通常会减弱植物的光合作用，细胞缺水条件下，光合作用的下调与抗氧化酶的活性有关，此时细胞内ROS大量积累，抗氧化系统作用减弱，造成细胞膜脂过氧化损伤，从而导致了植物光合碳同化能力下降。影响光合作用的各种生态因子都通过Rubisco而起作用(Brüggemann et al, 1992)。本研究中，盐处理0.5 h后，轻微的盐度增加，使藻体Rubisco活性有所增加，可能是因为轻微盐度刺激ATP和呼吸产生的还原能量，增强了藻体解毒系统对活性氧释放的反应活性。盐度超过40，Rubisco活性随盐度增加显著降低，可能是因为氧化的Rubisco是一种更好的蛋白酶底物，盐度胁迫可能会增强AOS造成的Rubisco降解(Ishida et al, 1997)。Rubisco可以通过调节光合作用和光呼吸来决定光合效率，高盐胁迫可能限制了藻体ATP的供应，影响了活化酶对Rubisco的激活，使Rubisco活性下降，进而对胁迫下的光合作用产生调控。有研究认为，在盐度胁迫下，鱼腥藻(Anabaena) Rubisco蛋白表达量增加，可能是由于离子胁迫和氧化损伤的积累效应(Rai et al, 2013)。大多数红藻对CO₂和HCO₃^-都能利用(Maberly, 1990)，CA与大型海藻高效的CO₂浓缩机制(CCM)密切相关。CA通过催化CO₂和HCO₃^-之间的相互转化，加速无机碳向羧化酶活性部位的扩散，还能增加1, 5-二磷酸核酮糖(RuBP)的羧化活性，降低其加氧活性，从而提高CO₂的固定速率。本研究中，盐处理0.5 h，盐度45以后，脆江蓠体内CA含量随盐度增加逐渐降低，表明高盐胁迫对藻体无机碳吸收产生了影响，CA能对环境胁迫进行适应性调节(张震林等, 1992)。