2. 湖南师范大学 省部共建淡水鱼类发育生物国家重点实验室 湖南 长沙 410081;
3. 贵州大学动物科学学院 贵州 贵阳 550025
2. State Key Laboratory of Developmental Biology of Freshwater Fish, School of Life Sciences, Hunan Normal University, Changsha, Hu'nan 410081, China;
3. School of Animal Science, Guizhou University, Guiyang, Guizhou 550025, China
褪黑激素(melatonin)是一种广泛分布于动物、植物、细菌和真菌中的天然小分子物质(Xu et al, 2017)。在哺乳动物中,褪黑激素主要由下丘脑中的松果体在夜间分泌,在性腺、骨髓、视网膜、晶状体、肾脏和肝脏等组织中也有发现(Carpentieri et al, 2012; Acuña-Castroviejo et al, 2014)。褪黑激素不仅具有调节昼夜节律、清除自由基的作用(Han et al, 2017),还能通过内分泌、旁分泌和自分泌方式保护细胞抗氧化和炎症损伤、改善胰岛素抵抗(Heo et al, 2018)、调控生殖发育(Maitra et al, 2016)、调节脂质代谢(Yang et al, 2017)和控制血压(de Berardis et al, 2013)。褪黑激素还能参与维持神经元的内稳态(Hermoso et al, 2016)和保护机体免疫系统的功能(艾克拜尔·热合曼等, 2018; Zhang et al, 2019)。
褪黑激素的功能主要通过与其高亲和力的特异性褪黑激素受体(melatonin receptor, Mtnr1)结合,再进一步启动信号级联反应,参与细胞内各种生理过程。Mtnr1属于G蛋白偶联受体超级家族(Brydon et al, 1999),与其他G蛋白偶联受体结构相似,包括7个跨膜域、1个G蛋白结合位点、多个磷酸化以及糖基化位点(Klosen et al, 2019)。另外,第3跨膜域的下游含有NRY结构域和C(C/Y) ICHS结构域,第7跨膜域中存在NPXXY结构域(Reppert et al, 1995b; Klosen et al, 2019)。Mtnr1在脊椎动物中存在3种不同亚型,分别为Mtnr1A (Mel 1a或MT1)、Mtnr1B (Mel 1b或MT2)和Mtnr1C (Mel 1c或GPR50) (Reppert et al, 1995a),而哺乳动物中仅有前2种亚型:Mtnr1A和Mtnr1B (Gaildrat et al, 2000),仅在鱼类等低等脊椎动物中发现第3种亚型Mtnr1C (Dufourny et al, 2008)。此外,鱼类特有基因组加倍事件导致Mtnr1A和Mtnr1B存在多个不同亚型,如斑马鱼(Danio rerio) Mtnr1Aa和Mtnr1Ab (Reppert et al, 1995b);虹鳟(Oncorhynchus mykiss) Mtnr1Aa、Mtnr1Ab和Mtnr1B (Mazurais et al, 1999);星点东方鲀(Takifugu niphobles) Mel1a1.4、Mel1a1.7和Mel1b (Ikegami et al, 2009b);大弹涂鱼(Boleophthalmus pectinirostris) Mel1a1.4、Mel1a1.7和Mel1b (朱文博等, 2012; Hong et al, 2014);大西洋鲑(Salmo salar) Mtnr1Aaα、Mtnr1Aaβ、Mtnr1Ab、Mtnr1al和Mtnr1B (Ciani et al, 2019);金鱼(Carassius auratus)Mel1a1.4、Mel1a1.7和Mel1b (Ikegami et al, 2009a)。值得注意的是,Mtnr1广泛参与机体神经调节(Klosen et al, 2019)、节律同步(Ikegami et al, 2009b)、内分泌激素合成(Ciani et al, 2019)和生长繁殖(Ikegami et al, 2009b; Hong et al, 2014)等生理活动。例如,敲除Mtnr1A基因后的小鼠表现出焦虑、类似抑郁症,增加了奖励和上瘾倾向,降低了快速眼动睡眠(Comai et al, 2019),生理节律(包括年生殖节律)也发生改变(Ng et al, 2017)。另外,Mtnr1在机体的细胞和体液免疫反应过程发挥积极作用,如在人(Homo sapiens)淋巴细胞(Jurkat)和单核细胞(U937)研究中发现,褪黑激素能通过Mtnr1增强其白细胞介素IL-2和IL-6分泌(García-Mauriño et al, 2000),添加MtnrB抑制剂Luzindole后,不仅降低了人淋巴细胞中IL-2和IL-2受体的分泌(Carrillo-Vico et al, 2004),还增强了前列腺素E2对IL-2的抑制效果(Carrillo-Vico et al, 2005)。此外,褪黑激素能促进野生型和MtnrA敲除型小鼠脾淋巴细胞增殖,而抑制MtnrA蛋白后增殖现象消失(Drazen et al, 2001)。这些研究证实了Mtnr1参与哺乳动物神经活动和免疫过程,但有关硬骨鱼类Mtnr1的研究仍处于起步阶段。
草鱼(Ctenopharyngodon idella)是我国重要的淡水经济鱼类,其2018年产量达到5.5万t (农业农村部渔业渔政管理局等, 2019)。草鱼疾病的暴发与其免疫调节能力密切相关,褪黑激素在机体免疫过程中具有重要作用,Mtnr1是褪黑激素发挥生理功能的关键受体分子,因此,解析Mtnr1基因在草鱼免疫调节中的功能对草鱼疾病的免疫防治具有重要意义。本研究以草鱼为研究对象,克隆得到Mtnr1基因6种异构性的全长cDNA序列,通过生物信息学技术,研究不同亚型的序列和结构特征,同时,采用实时荧光定量PCR (RT-qPCR)检测6种亚型在不同组织/器官中的分布和表达模式,研究结果可为Mtnr1在脊椎动物中的进化补充数据,同时,可为后续深入研究其基因功能以及揭示Mtnr1在草鱼免疫过程中的作用奠定分子基础。
1 材料与方法 1.1 实验材料实验草鱼购自湖北荆州水产市场,大小规格为(1.00±0.25) kg,暂养在实验室循环养殖系统2周。水温为(24±2)℃。饱食投喂2次/d (09:00和17:00)。暂养结束后,饥饿24 h取样,用MS-222 (10 mg/L)麻醉鱼体,在冰上迅速取出其肝脏、心脏、鳃、脑、肌肉、前肠、中肠、后肠和肾脏9个组织,液氮速冻后,存于–80℃冰箱备用。
1.2 实验方法 1.2.1 总RNA的提取和cDNA的合成采用Total RNA kit I提取试剂盒(Omega, 美国)提取总RNA,使用1%的琼脂糖凝胶电泳和超微量核酸蛋白测定仪(Thermo Scientific, 美国)检测RNA完整性和浓度。利用MonScriptTM RTⅢ Super Mix with dsDNase (two-step) (莫纳, 苏州)合成cDNA,严格按照试剂盒说明书操作,PCR产物保存于–20℃。
1.2.2 草鱼Mtnr1基因全长cDNA克隆利用斑马鱼、鲤鱼(Cyprinus carpio)、鲫鱼(Carassius auratus)以及哺乳动物人类、褐家鼠(Rattus norvegicus)等已公布Mtnr1A、Mtnr1B和Mtnr1C基因序列,比对保守区域后设计引物(表 1),进行扩增实验。再基于获得的部分cDNA序列,分别利用RACE技术,按照RACE试剂盒(TaKaRa)对Mtnr1的5′和3′端进行扩增。扩增产物测序正确后,通过DNAStar软件拼接获得完整的cDNA序列。
利用NCBI中Blast (http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/)分析获得的Mtnr1不同亚型cDNA序列的正确性。通过NCBI网站的ORF Finder (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/orffinder/)查找Mtnr1不同亚型的ORF框。使用ExPASy (http://web.expasy.org/translate/)翻译Mtnr1不同亚型cDNA编码蛋白序列。利用ProtParam在线软件预测Mtnr1不同亚型的蛋白基本理化特性(https://web.expasy.org/protparam/)。通过Tmpred在线软件对Mtnr1不同亚型的跨膜域进行预测(http://www.cbs.dtu.dk/services/ TMHMM/#opennewwindow)。并采用Singal4.1软件预测其信号肽。采用Phyre2软件对Mtnr1不同亚型蛋白质的三级结构进行预测(http://www.sbg.bio.ic.ac.uk/phyre2/html/page.cgi?id=index)。利用Cell-PLoc2.0在线软件(http://www.csbio.sjtu.edu.cn/bioinf/Cell-PLoc-2/)预测Mtnr1的亚细胞定位。通过NetPhos和NetNGlyc软件分别对蛋白磷酸化位点(http://www.cbs.dtu.dk/services/NetPhos/)和糖基化位点(http://www.cbs.dtu.dk/services/NetNGlyc/)进行分析。采用ClustalW软件对Mtnr1不同亚型不同物种间进行序列比对和一致性分析。最后利用MEGA 5.2软件,以邻接法(NJ)对Mtnr1构建系统进化树,设定bootstrap值为1000。
1.2.4 草鱼Mtnr1基因的表达模式随机选取4条暂养后的草鱼,分别提取9个不同组织(肝脏、心脏、鳃、脑、肌肉、前肠、中肠、后肠和肾脏)的总RNA,设置4个生物学重复。以总RNA为模板,按照MonScriptTM RTⅢ Super Mix with dsDNase (莫纳,苏州)说明书合成cDNA,并将cDNA稀释10倍作为RT-qPCR模板,保存于–20℃备用。Mtnr1基因的组织表达模式测定方法参考侯吉伦等(2019):依据克隆获得的草鱼Mtnr1基因序列,利用Primer 5.0软件,设计Mtnr1基因RT-qPCR定量引物RT-F和RT-R,并以β-actin为内参基因(表 1)。根据说明书设置定量反应体系:SYBRⓇ fast qPCR master mixⅡ20 μL,cDNA模板4 μL,引物各0.5 μL。RT-qPCR反应程序:95℃ 5 min;95℃ 15 s,60℃ 30 s,72℃ 20 s,共40个循环。利用2–ΔΔCt方法(Livak et al, 2002)检测Mtnr1不同亚型在不同组织中的表达模式。
1.3 统计分析实验结果均采用平均值±标准误(Mean±SE)表示,为确保实验过程中数据的准确性,设置4个生物学重复,每个生物学重复设置3个技术重复。采用SPSS 18.0进行统计分析,采用单因素方差分析(one-way ANOVA)的Tukey法对Mtnr1不同亚型的相对表达量进行两两比较,显著性水平设置为0.05。
2 结果与分析 2.1 Mtnr1基因亚型cDNA序列分析利用DNAStar将克隆获得的cDNA进行拼接,并通过NCBI中的Blast对获取的序列进行正确性验证,本实验克隆得到草鱼6个Mtnr1 cDNA序列,分别为Mtnr1Aa、Mtnr1Ab、Mtnr1Alike、Mtnr1Ba、Mtnr1Bb和Mtnr1C,并将其提交至NCBI的GenBank,序列号分别为MT883605、MT883607、MT883608、MT883606、MT883609和MT883610,其全长分别为2045、2036、2031、2799、2535和2477 bp (表 2)。ProtParam软件预测发现,草鱼Mtnr1基因编码蛋白的氨基酸数、分子量和等电点分别见表 2。Mtnr1Aa、Mtnr1Ab、Mtnr1Alike、Mtnr1Ba、Mtnr1Bb和Mtnr1C基因编码蛋白均由20种氨基酸组成,含量最高的氨基酸分别为缬氨酸(12.6%)、缬氨酸(11.3%)、亮氨酸(11.6%)、亮氨酸(13.0%)、亮氨酸(11.6%)和亮氨酸(12.5%),含量最低的氨基酸分别为色氨酸(1.7%)、组氨酸(1.4%)、谷氨酰胺(1.5%)、组氨酸(1.1%)、组氨酸(1.2%)和组氨酸(1.4%)。带正(负)电氨基酸残基数分别为28(17)、18(32)、19(33)、17(35)、16(30)和11(31)。原子组成分别为C1853H2853N461O475S18、C1877H2905N463O479S17、C1836H2845N463O458S15、C1820H2883N489O470S18、C1819H2825N463O463S13和C1839H2885N481O484S20。蛋白质不稳定系数分别为35.19、35.32、30.93、38.67、35.74和34.75,均属于稳定蛋白。总平均亲水性分别为0.560、0.560、0.556、0.490、0.675和0.502,均为亲水性蛋白。脂肪酸指数分别为113.77、116.36、120.90、115.24、119.28和109.58。
利用TMpred在线软件对草鱼Mtnr1的6种亚型蛋白跨膜域进行分析。结果显示,草鱼Mtnr1的6种亚型均存在7个跨膜结构,包括N端、跨膜区域、细胞膜内和膜外区域以及C端,表明其为非胞内蛋白。通过Cell-PLoc 2.0在线软件预测Mtnr1的6种亚型编码蛋白亚细胞定位,显示均定位于细胞膜。通过SignalP4.1预测草鱼Mtnr1的6种基因编码蛋白质的氨基酸序列,均未发现信号肽序列,说明6种亚型编码蛋白均为非分泌型蛋白。利用Phyre2在线软件构造草鱼Mtnr1的6种模拟蛋白3D亚型与人Mtnr1A和Mtnr1B蛋白以及斑马鱼的6种模拟结构对比,结果显示,蛋白结构较为相似(图 1)。此外,通过多重氨基酸序列比较可知,Mtnr1的6种亚型具有NRY结构域、CYICHS结构域、NAXXY结构域和G蛋白偶联受体结合位点(图 2)。利用NetNGlyc 1.0和NetPhos 3.1预测功能位点,结果发现,6种亚型受体的糖基化位点和磷酸化位点数分别为Mtnr1Aa (Asn4、Asn9和Asn117/22、Mtnr1Ab (Asn7、Asn13和Asn121)/28、Mtnr1Alike (Asn37和Asn144)/17、Mtnr1Ba (Asn4、Asn10和Asn122)/24、Mtnr1Bb(Asn10和Asn121)/25和Mtnr1C (Asn7、Asn25和Asn121)/30。
基于ClustalW,对草鱼Mtnr1的6种不同亚型编码的氨基酸序列同已有物种的Mtnr1序列同源性进行比较分析,结果见表 3。6种亚型与其他鱼对应的亚型同源性很高,分别为93.1%~99.4%、84.8%~ 95.2%、82.8%~96.8%、90.1%~97.5%、79.7%~98.3%和90.6%~95.6%。另外,运用MEGA 5.2软件构建草鱼Mtnr1的6种亚型氨基酸序列的系统进化树(图 3),Bootstrap重复次数设为1000次迭代。结果表明,构建的进化树与氨基酸的多重比较结果较一致。草鱼Mtnr1的6种亚型均与其他鱼类的对应亚型聚为一支,且与鲤鱼、鲫鱼和斑马鱼亲缘关系最近。
采用RT-qPCR技术检测了Mtnr1基因在草鱼肝脏、心脏、鳃、脑、肌肉、前肠、中肠、后肠和肾脏9个组织的表达情况。结果显示,Mtnr1的6种亚型在所检测的组织中均有表达(图 4)。其中,Mtnr1Aa基因在脑组织中表达量最高(P < 0.05),肾脏、鳃、中肠、心脏次之,而在肝脏组织中表达量最低(P < 0.05)。Mtnr1Ab基因在脑组织中表达量最高(P < 0.05),然后依次为肾脏、肌肉、后肠、肝脏和心脏,在鳃、前肠及中肠中表达量最低(P < 0.05),而鳃、前肠以及中肠之间表达量无显著差异(P > 0.05)。Mtnr1Alike基因在肾脏中表达量最高(P < 0.05),然后依次为脑、前肠、后肠和中肠,而在肝脏中表达量最低(P < 0.05)。Mtnr1Ba基因mRNA水平在脑中表达量最高,其次在肾脏、前肠和中肠表达量居中,随后心脏、鳃、肌肉和后肠中表达量次之,且它们之间无显著性差异(P > 0.05),在肝脏中表达量最低(P < 0.05)。Mtnr1Bb在脑中含量最高,其次为心脏,在其余组织中含量最低且它们之间无显著性差异(P > 0.05)。Mtnr1C基因表达量在肾脏组织中最高(P < 0.05),其次为脑、中肠和心脏,在肝脏组织中含量为最低(P < 0.05)。此外,从对亚型表达热图可知(图 5),6种亚型均在脑和肾脏组织中大量表达,其次为肠道组织,进一步发现,在脑组织中Mtnr1Aa基因表达量最高(P < 0.05),其次为Mtnr1Ba、Mtnr1C、Mtnr1Alike和Mtnr1Bb,而Mtnr1Ab基因表达量最低(P < 0.05) (图 5)。在肾脏组织中发现Mtnr1Ba表达量最高,其次为Mtnr1C、Mtnr1Alike、Mtnr1Aa和Mtnr1Ab,而Mtnr1Bb基因表达量最低(P < 0.05) (图 5)。另外,在前肠中发现Mtnr1Ba基因表达量最高(P < 0.05),其次为Mtnr1Alike、Mtnr1C、Mtnr1Aa和Mtnr1Bb,而Mtnr1Ab表达量最低(P < 0.05)。中肠中Mtnr1Ba基因表达量最高(P < 0.05),其次为Mtnr1C、Mtnr1Alike、Mtnr1Aa和Mtnr1Bb,而Mtnr1Ab表达量最低(P < 0.05)。后肠中Mtnr1Ba和Mtnr1Alike基因表达量最高(P < 0.05),且二者之间无显著差异(P > 0.05),其次为Mtnr1C、Mtnr1Aa和Mtnr1Ab,而Mtnr1Bb表达量最低(P < 0.05) (图 5)。
本研究成功克隆得到草鱼Mntr1基因6个亚型的cDNA全长序列,全长序列长度为2031~2799 bp,编码的氨基酸个数为344~361,无信号肽序列,均属于非分泌型蛋白。Mtnr1的6种亚型由7个跨膜结构(Ⅰ~Ⅶ)构成,属于典型的G蛋白偶联受体(Shiu et al, 1998)。多序列比对结果显示,草鱼Mtnr1存在NRY结构域、CYICHS结构域、NAXXY结构域和G蛋白偶联受体结合位点以及多个糖基化和磷酸化位点,这与大西洋鲑和大弹涂鱼的Mtnr1基因研究结果一致(Hong et al, 2014; Ciani et al, 2019; Klosen et al, 2019),暗示草鱼Mtnr1在进化中具有较高的保守性。另外,6种亚型的3D结构与斑马鱼和人的Mntr1空间结构相似,进一步证实其进化保守性。同时,同源性比较发现,草鱼Mtnr1基因6种亚型(Mtnr1Aa、Mtnr1Ab、Mtnr1Alike、Mtnr1Ba、Mtnr1Bb和Mtnr1C)与其他鱼对应的Mntr1亚型同源性很高,分别为93.1%~99.4%、84.8%~95.2%、82.8%~96.8%、90.1%~ 97.5%、79.7%~98.3%、和90.6%~95.6%。系统进化树结果显示,草鱼Mtnr1基因6种亚型与鲤鱼、鲫鱼和斑马鱼等鲤科(Cyprinidae)鱼类的各亚型聚为一支,表明草鱼Mtnr1与鲤科鱼类亲缘关系较近,这与它们的进化地位一致。
Mtnr1的6种亚型基因在草鱼脑、肝脏、心脏、鳃、肌肉、前肠、中肠、后肠和肾脏9个组织中均有表达,表明Mntr1可能广泛参与机体各种生理活动(Hong et al, 2014)。本研究发现,Mtnr1Aa、Mtnr1Ab、Mtnr1Ba和Mtnr1Bb 4种亚型集中在脑组织中表达,暗示其主要参与神经调节相关的活动(Klosen et al, 2019)。这与大西洋鲑(Ciani et al, 2019)、星点东方鲀(Ikegami et al, 2009b)和金鱼(Ikegami et al, 2009a)中的研究相似。如Ikegami等(2009b)研究发现,Mel1a 1.4、Mel1a 1.7和Mel1b均在星点东方鲀脑组织、视网膜、脑垂体和外围组织中表达,且在脑组织中表达量最高。另外,褪黑激素在生物钟网络中既是视交叉上核(suprachiasmatic nuclei, SCN)的时钟输出,又是内部同步器,表明它的主要功能是充当时钟输如“time giver” (Pevet et al, 2011)。而褪黑激素功能发挥依赖于Mtnr1的表达,Mtnr1在脑组织中的高表达,间接证实褪黑激素在草鱼机体神经调节过程中具有重要作用。
此外,本研究显示,Mtnr1Ba基因在草鱼前肠、中肠和后肠中均高表达,Mtnr1Alike在后肠中高表达,Mtnr1的表达呈现组织差异性。这与哺乳动物和水禽类中的研究类似,如大鼠MT2在其结肠中mRNA水平最高,而MT1基因在十二指肠内表达量最高,在回肠和空肠中表达低(Stebelová et al, 2010);MT1和MT2在人胃肠道肌间神经丛、肠上皮和胃肠血管中均有表达,且在大肠上皮表达量最高(Söderquist et al, 2015);鸭肠道2-125碘褪黑素结合位点密度大小依次为回肠、空肠 > 十二指肠、结肠 > 盲肠(Lee et al, 1993)。另外,研究表明,Mtnr1介导褪黑激素作用肠道粘膜肌层和肠肌间神经丛发挥免疫功能,抵抗各种病原微生物的侵袭(Esteban-Zubero et al, 2017)。本研究中,Mtnr1基因在肠道不同部位表达量存在差异,暗示Mtnr1在草鱼肠道不同部位可能发挥不同的免疫功能,但尚需进一步研究。
值得注意的是,本研究发现,除Mtnr1Alike和Mtnr1C亚型外,Mtnr1Aa、Mtnr1Ab和Mtnr1Ba也在肾脏中高表达,这与金鱼中的研究结果类似(Ikegami et al, 2009a),而与欧洲鲈鱼(Dicentrarchus labrax) (Sauzet et al, 2008)鳃、星点东方鲀(Ikegami et al, 2009b)神经和垂体表达相异,究其原因可能是亚型基因表达存在物种和组织的特异性。肾脏作为鱼体主要的免疫器官,免疫功能相关基因在该组织中呈现高表达(侯吉伦等, 2019),在哺乳动物小鼠的胸腺和肾脏免疫器官中已经证实,Mtnr1mRNA表达量较高(Carrillo-Vico et al, 2003)。本研究结果显示,草鱼Mntr1亚型mRNA在肾脏中表达量高,暗示Mtnr1可能与免疫相关。而褪黑激素主要通过与高亲和力的特异性Mntr1蛋白结合,随后启动信号级联反应在靶细胞上介导各种生理活动(Klosen et al, 2019)。另外,褪黑激素可以直接作用于机体的免疫活性过程,如Cuesta等(2008)研究发现,金头鲷(Sparus aurata)注射褪黑激素后,血液中过氧化物酶、吞噬作用和活性氧中间体等活性以及干扰素-1β、主要组织相容性复合体、病毒相关效应和淋巴标记等基因表达显著上升。同样地,相对于对照组,注射褪黑激素后中华绒螯蟹(Eriocheir sinensis)血淋巴中超氧化物歧化酶活性显著增加,丙二醛的含量显著下调(She et al, 2019)。目前,尽管本研究Mntr1基因在肾脏中高表达,但仅推测Mntr1亚型介导了草鱼的免疫反应,而草鱼受到病原或褪黑激素刺激后,Mntr1亚型的表达和免疫效应情况并不清楚,需要后续开展实验进一步探究。
综上所述,本研究首次在草鱼组织中成功克隆得到Mntr1的6种亚型的cDNA序列,并对其序列结构进行了分析,通过对6种亚型在组织表达模式的研究,初步表明Mtnr1Aa和Mtnr1Ba基因与草鱼神经调节和免疫反应有关,为今后深入研究Mtnr1Aa和Mtnr1Ba基因在草鱼神经调节和免疫功能方面提供了理论依据。
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