2. 武汉市农业科学院 湖北 武汉 430065
2. Wuhan Academy of Agricultural Sciences, Wuhan, Hubei 430065, China
鳜(Siniperca chuatsi)亦称桂花鱼,属鲈形目(Perciformes)、
健康鳜,体长约为(20± 4) cm,体重约为(200±20) g,来源于湖北省武汉市农业科学院养殖基地。鳜传染性脾肾坏死病毒(ISKNV)、鳜蛙虹彩病毒(MFRaIV)、大口黑鲈蛙虹彩病毒(LMBRaIV)、大鲵虹彩病毒(GSIV)、草鱼呼肠孤病毒(GCRV-I)、锦鲤疱疹病毒(KHV)、鲤浮肿病毒(CEV)和鲤疱疹病毒Ⅱ型(CyHV-2)均由本实验室分离保存。
1.1.2 试剂与耗材L-15、RPMI1640、M199、MEM、DMEM培养基、二甲基亚砜(DMSO)、秋水仙素、胎牛血清(FBS)、Antibiotic-Antimycotic (100×)购自Gibco公司;Ⅰ型胶原酶购自上海源叶生物科技有限公司;生长因子bFGF和IGF购自Peprotech公司;含0.25% EDTA的胰蛋白酶溶液购自杭州吉诺生物医药技术公司;Lipofectamine®2000购自Invitrogen公司;HPV碘购自北京渔经生物技术有限责任公司。
1.2 方法 1.2.1 原代培养和传代培养20 mg/L的HPV碘浸泡鳜30 min,然后用75%酒精擦拭鳜鱼体表,在生物安全柜内取鳜鱼脑组织,置于含有2×Antibiotic- Antimycotic的PBS缓冲液中洗涤4~5次后,在无菌培养皿中,用灭菌的眼科剪刀将组织剪成约3 mm3大小的组织块,移至50 mL离心管中,加入适量含0.25% EDTA的胰蛋白酶和胶原酶的消化液,37℃消化0.5~1 h后,用含10% FBS的L-15培养基终止消化,过滤后,1000 r/min离心5 min,加5 mL L-15培养基重悬后移入25 cm2的细胞培养瓶中,培养基中含30%胎牛血清、100 U/mL青霉素、100 μg/mL链霉素、10 ng/mL的bFGF和40 ng/mL IGF,置于28℃培养箱进行原代培养,逐日观察细胞贴壁状况,4 d或5 d后换液,之后每3 d更换1/2培养液。当细胞单层达培养瓶底面积的80%时,参照曾令兵等(2009)的方法对细胞进行传代培养。当传代至第5代后将培养基中FBS的浓度降低至15%;当细胞传代至第10代后,培养基中FBS的浓度降低至10%,并且不再添加生长因子等添加物。
1.2.2 细胞最佳培养条件的确定MFB细胞最佳培养基的确定:选择5种不同的培养基L-15、RPMI1640、M199、MEM和DMEM,分别配制血清体积分数为10%的完全培养基。将细胞密度调整至5×104个/mL,接种到24孔板,每孔1 mL,置于28℃培养箱,每天取3孔计数,连续取7 d,绘制其在不同培养基条件下的生长曲线,确定MFB细胞的最佳培养基。
MFB细胞最适培养温度的确定:用血清体积分数为10%的L-15培养基将消化好的细胞密度调至为5×104个/mL,接种至24孔板,分别置于15℃、22℃、28℃和34℃培养箱中,每天取3孔计数,连续取7 d,绘制其在不同温度下的生长曲线,确定MFB细胞最适培养温度。
MFB细胞最适血清浓度的确定:配制血清体积分数分别为5%、10%、15%和20%的L-15培养基,将消化好的细胞密度调至为5×104个/mL,接种至24孔板,每天取3孔计数,连续取样7 d,绘制其在不同血清浓度条件下的生长曲线,确定MFB细胞最适血清浓度(曾令兵等, 2009; 赵建青等, 2019)。
1.2.3 鳜脑细胞的生长特性测定按照1.2.2的细胞密度和方法将MFB细胞接种至24孔板中,每孔1 mL,置于28℃恒温培养箱培养,培养基为L-15。每隔12 h取出3孔细胞消化后分别计数,连续取7 d并绘制生长曲线;根据T=t×lg2/lg(Nt/N0)计算MFB细胞的群体倍增时间,式中,Nt为t时间的细胞数,N0为接种细胞数。
1.2.4 细胞染色体分析取25代鳜脑组织细胞,培养24 h后更换新鲜培养基,添加终质量浓度为1 µg/mL的秋水仙素,继续培养13~16 h,用Trypsin- EDTA消化细胞单层并离心收集细胞悬液。参照Wang等(2004)和Lu等(2000)的方法进行染色体制片,100倍油镜下观察和统计MFB染色体数目。
1.2.5 28S rRNA基因序列分析与比对设计鳜28S rRNA基因的特异性引物(MF-18SF: 5´-TAGCGA AACCACAGCCAAGG-3´; MF-18SR: 5´-CCAACGCT TGGTGAATTCTG-3´),以MFB细胞总基因组DNA为模板,进行PCR扩增。扩增片段经测序后,于NCBI GenBank数据库中进行Blast比对与分析。
1.2.6 神经元类细胞的免疫荧光鉴定将MFB细胞传至共聚焦皿中,待细胞长至80%,吸净皿中原有培养基,用磷酸盐缓冲溶液(PBS)浸洗3次,每次5 min;4%多聚甲醛室温固定30 min;使用0.2% TritonX-100室温孵育10~15 min,去除TritonX-100后,用PBS浸洗3次,每次5 min;在细胞孔板里滴加按一定比例稀释的一抗:β-tubulin (1∶250)、Neu-N (1∶200),平放于湿盒内4℃孵育过夜。一抗孵育结束后用PBS浸洗3次,每次5 min,去除PBS后,滴加与一抗相应种属的二抗(Cy3稀释比例为1∶2000)稀释液覆盖细胞,室温避光孵育50~120 min;用PBS浸洗3次,每次5 min,去除PBS后在皿中滴加DAPI染液,避光室温孵育10 min;用PBS浸洗3次,每次5 min,在共聚焦显微镜下观察并拍照。
1.2.7 MFB对常见水生病毒的敏感性取39代MFB细胞传至T25细胞培养瓶中,待细胞长至80%时,分别接种ISKNV、MFRaIV、LMBRaIV、GSIV、GCRV-I、KHV、CEV和CyHV-2等8种病毒,每个T25细胞瓶接种0.5 mL病毒液,用无血清培养基补足1 mL,28℃培养箱中孵育1 h后,加4 mL含2% FBS的L-15培养基,在显微镜下观察细胞病变效应(cytopathic effect, CPE)发生情况。能连续产生CPE的病毒传5代后,采用微孔板培养法(李莉娟等, 2013)测病毒滴度。将胰酶消化分散后的MFB细胞接种到96孔板中(Corning, 美国),每孔接种0.1 mL,每孔细胞数约为1×104~2×104个/mL。在离心管中用L-15培养基对病毒液进行连续10倍的稀释。将稀释好的病毒液按梯度分别接种到96孔培养板中,每个稀释度接8孔,每孔接种100 µL。同时设正常细胞对照,逐日观察并记录结果,观察7 d。按Reed-Muench两氏法计算结果(李莉娟等, 2013)。
1.2.8 MFB的瞬时转染效率转染前1 d,将细胞传代1次,使转染当天T25细胞培养瓶中细胞密度达到85%~90%的融合。参照Lipofectamine®2000 Reagent说明书操作,配制DNA-脂质体转染复合物,将配置DNA-脂质体转染复合物逐滴加入培养瓶中并混匀;28℃培养4~6 h后换成含10%胎牛血清的L-15培养基,28℃培养48 h,在倒置荧光显微镜下观察转染水平,随机选取5个视野(100×),计算阳性转染细胞数和总细胞数,取其均值作为转染效率(阳性转染细胞),计算公式如下,
$ 转染效率/\%=阳性细胞数/视野细胞总数\times 100\% $ |
采用胰酶消化法培养技术,对来源于鳜脑组织的细胞进行原代培养,消化后第2天约有30%的细胞贴壁,7 d左右形成单层,约占瓶底面积的80% (图 1A)。细胞传代后约5 d可形成单层,传代至第5代后细胞生长速度加快,约3~5 d即可传代。鳜脑组织细胞传代后贴壁良好,待传代至第10代时,更换为含10% FBS的L-15培养基。目前,鳜脑组织细胞系已经传至70多代,细胞生长稳定,命名为MFB细胞系(图 1B)。
MFB细胞在L-15、RPMI1640、M199、MEM、DMEM 5种不同培养基中均能稳定生长增殖,细胞计数结果显示:MFB细胞在L-15、M199培养基中增殖速度最快,培养第5天形成致密细胞单层,但从细胞状态以及单层维持时间方面看,L-15培养基要优于M199培养基,细胞数目超过2.5×105个/mL。在RPMI1640和MEM培养基中,MFB细胞能正常生长,不过增殖速度比较缓慢。在DMEM培养基中,MFB细胞不能正常增殖,细胞慢慢开始死亡(图 2)。
使用L-15培养基,分别添加5%、10%、15%和20%血清,在28℃培养MFB细胞。细胞计数结果显示:在含5%和20%血清的培养基里,MFB细胞均可以正常的贴壁、生长,但细胞的增殖速度缓慢。在含10%血清的L-15培养基里,细胞生长增殖迅速,1—5 d间呈近指数生长,培养至第5天细胞数目超过2.5×105个/mL;但在细胞单层的稳定性及保持时间方面,含10%血清的培养基优于含其他浓度血清的L-15培养基(图 3)。
使用L-15培养基并添加10%胎牛血清,分别在15℃、20℃、28℃、34℃ 4个不同温度条件下培养鳜脑组织细胞的统计计数结果显示:在15℃条件下培养,细胞能正常贴壁,细胞数目最高至8.75×104个/mL,但生长速度缓慢;在28℃条件下培养,细胞生长增殖迅速,MFB细胞到第5天能形成稳定的细胞单层,细胞数目最高至3.0×105个/mL;在20℃和34℃培养条件下,细胞生长至第6天生长数目超过1×105个,随后培养板中出现较多死亡细胞,致密细胞单层开始出现空洞(图 4)。
从第30代鳜脑组织细胞的生长曲线(图 5)可以看出,细胞贴壁、生长、增殖前1.5 d为迟缓期,1.5—3.5 d处于对数期,4.5—6.5 d为基本平台期。通过公式计算,第30代脑细胞的群体倍增时间为46.6 h,表明继代培养的鳜脑组织仍表现出旺盛的生长增殖状态。
染色体统计计数结果显示,第25代鳜脑组织细胞的染色体数目分布在20~60之间,其中拥有52条染色体的细胞占总细胞数的19%,染色体众数56出现率为20% (图 6),表明第25代MFB细胞的染色体出现了很大的变化,从染色体图片上可以看出,细胞的染色体出现了丢失(图 7)。
以MFB细胞总基因组DNA为模板,设计鳜28S rRNA基因的特异性引物,PCR扩增获得大小为528 bp的部分基因片段,与预期大小相符(图 8)。PCR扩增片段经测序后,于GenBank数据库中进行Blast比对与分析。结果显示,PCR扩增MFB细胞28S rRNA基因528 bp的序列与GenBank中发布的来源于鳜28S rRNA基因(EF120974)的序列同源性为100%,证明此细胞系来源于鳜。
对传代50代后的细胞进行免疫荧光染色鉴定,共聚焦显微镜下观察神经元标志蛋白β-tubulin和神经元特异性蛋白Neu-N表达均为红色,呈阳性。在DAPI染色后,细胞核呈蓝色,整个视野下全部细胞均呈红色阳性表达(图 9),表明建立的MFB细胞为神经元类细胞。
ISKNV、GCRV-I、KHV、CEV和CyHV-2不能在MFB细胞中增殖,病毒接种7 d后均未出现CPE,且盲传培养7次均未出现CPE;MFRaIV、LMBRaIV、GSIV接种MFB细胞,1~2 d后均出现CPE (图 10),病毒滴度依次为108.68±0.12、108.36±0.15、1010.15±1.85 TCID50/mL,对盲传7次后的样品进行PCR检测,结果显示,MFRaIV、LMBRaIV和GSIV均能扩出单一的目的条带,ISKNV、GCRV-I、KHV、CEV和CyHV-2无目的条带。
MFB细胞传代50代后,采用脂质体转染pEGFP-N1质粒,转染后48 h在荧光倒置显微镜下观察,可见绿色细胞,以随机5个视野中绿色阳性细胞的数目占总细胞的比例为转染效率,绿色细胞阳性率可达(22.20±1.72)%(图 11)。
细胞体外培养方法分为组织块移植法、机械分散法和消化分离法,其中消化分离法又分为胰蛋白酶消化法、胶原酶消化法和EDTA消化法(王宣刚等, 2021)。本研究采用含0.25% EDTA的胰蛋白酶和Ⅰ型胶原酶消化法结合机械分离法,消化后获得的细胞量大,且该方式对细胞的损伤也较小(杨银芬等, 2011),可有效地提高细胞生长成稳定单层细胞的速度。此外,该方法相比于组织块移植法,具有快速、操作简单等优点。
培养基种类、血清浓度、培养温度等条件,对细胞的增殖均至关重要,关于细胞培养生长特性的研究主要也集中在这几个方面(代金彩等, 2021)。本研究使用了5种不同培养基、4种不同血清浓度以及4种不同温度进行细胞培养,对不同条件下的细胞生长速度进行比较,发现MFB细胞最佳培养条件为L-15培养基,10%血清浓度,28℃下培养。在最适培养条件下,MFB细胞数目的倍增时间约为46.6 h。与另外一株鳜脑组织细胞(Chinese perch brain cell, CPB)的最佳培养基一致(Fu et al, 2015),但与鳜鱼苗细胞(mandarin fish fry cell, MFF-1)的最适培养基DMEM不同(Dong et al, 2008),这可能与细胞对营养物质的需求和本身生长特性有关,也可能与MFB是神经元类成纤维细胞而MFF是上皮样细胞有关。
染色体核型分析是鉴定细胞系的一个重要指标。染色体分析显示,第25代MFB染色体数分布在20~ 60之间,染色体众数为56,出现频率为20%,与已报道的鳜染色体数2n=48有差异,表明MFB细胞在体外传代过程中,染色体出现畸变、缺失、断裂或重组。一般脊椎动物在传代约50代以后染色体数目才会出现变化(曾令兵等, 2009),而MFB细胞在传代25代后染色体就出现了变化,说明MFB细胞在体外培养的过程中容易受环境的影响,但其机理有待于进一步研究。
Neu-N (neuronal nucleus)是一种神经系统特异性核调节分子,是一种特有的神经元结合蛋白,广泛应用于研究和诊断有丝分裂后的神经元抗原(Lind et al, 2005; Mullen et al, 1992)。β-tubulinⅢ是成熟神经元的标志性骨架蛋白,主要分布在突触和胞浆中(Reynolds et al, 1992; Manochantr et al, 2015)。因此,本研究选取Neu-N和β-tubulinⅢ作为检测指标。对传代50次后的细胞进行免疫荧光染色鉴定,共聚焦显微镜下观察神经元标志蛋白β-tubulin和神经元特异性蛋白Neu-N表达均为红色,并且整个视野下全部细胞均呈红色阳性表达,表明本研究所建立的MFB细胞为神经元细胞。
病毒需要在活细胞内增殖,因此敏感细胞系的建立是开展病毒研究的重要基础(王津津等, 2016)。本研究使用MFB细胞对8种常见水生病毒进行培养,发现MFRaIV、LMBRaIV和GSIV均能产生典型CPE,病毒滴度分别达到108.68±0.12、108.36±0.15、1010.15±1.85 TCID50/mL,说明MFB细胞对MFRaIV、LMBRaIV和GSIV均敏感,且GSIV在MFB细胞中的复制水平高于MFRaIV和LMBRaIV。而MFB细胞对ISKNV、GCRV-I、KHV、CEV和CyHV-2不敏感。国内已经建立的来源于鳜苗的细胞系MFF (Dong et al, 2008)和来源于鳜脑组织的细胞系CPB (Fu et al, 2015)对ISKNV均敏感,滴度分别为106.58~106.62和106.6~107.4 TCID50/mL。本研究建立的MFB细胞接种ISKNV后,不产生CPE,且盲传7代PCR未能检出病毒特异的核酸目的条带,说明本研究的MFB细胞与Fu等建立CPB有一定差异(Fu et al, 2015)。此外,GSIV在MFB细胞中滴度高达1010.15±1.85 TCID50/mL,高于感染鲤鱼上皮瘤细胞的滴度(109.5~10.5 TCID50/mL)(Meng et al, 2014),说明该细胞是一种对GSIV高度敏感的细胞系,具有较高的科研价值和重要的产业应用潜力。将外源基因转染进细胞对于基因的功能研究是非常关键的一步。陈晓武等(2018)研究建立了一种使用体外包装逆转录病毒感染的方法,转染鳜胚胎细胞的效率可达(20±5)%,而另一株鳜脑细胞(CPB)的瞬时转染效率为10% (FU et al, 2015)。本研究使用Lipofectamine®2000将pEGFP-N1转染MFB细胞的效率可达20%以上,表明MFB细胞可作为功能表达研究的工具。
本研究成功建立了鳜脑组织细胞系,并且发现鳜蛙虹彩病毒(MFRaIV)、大口黑鲈蛙虹彩病毒(LMBRaIV)和大鲵虹彩病毒(GSIV)均能在MFB细胞系上产生典型的细胞病变效应(CPE),同时还发现该细胞可用于外源基因的功能研究,不仅丰富了鳜细胞资源,而且为进一步研究鳜病毒感染机理以及疾病防控技术提供了重要的实验材料。
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