2. 山东师范大学 山东 济南 250014
2. Shandong Normal University, Jinan, Shandong 250014, China
干扰素调节因子(interferon regulatory factors, irfs)是一类转录因子家族,能够调控干扰素(interferon, IFN)的转录过程。在机体受到感染时,irfs能结合IFN启动子并诱导调节IFN而得名(Veals et al, 1992, Zhang et al, 2012)。在哺乳动物irfs家族已发现9个irf成员(irf1~irf9)(Barnes et al, 2002; Nguyen et al, 1997),随后在鸟类和鱼类中鉴定出irf10基因。通过解析鱼类基因组发现,鱼类中存在11个irf家族成员,其中,irf11为硬骨鱼类所特有(Stein et al, 2007)。所有的IRFs N端都有一个由115个氨基酸组成的结构域,称为DNA结合域(DNA binding domain, DBD)。DBD含有5个色氨酸重复序列,其中3个重复序列可识别干扰素刺激反应元件(IFN-sensitive response elements, ISRE)正调控序列区域DNA的GAAA和AANNNGAA序列(Escalante et al, 1998)。IRFs通过C末端的IAD结构域(IRF-associated domain),与其他转录因子相互作用来激活信号通路,实现其转录调控作用(Taniguchi et al, 2001)。IRFs是模式识别受体信号转导、促炎症因子与趋化因子转录及激活免疫应答反应过程中的重要分子,不仅参与IFN的信号通路,还在防御病毒与应激反应的过程中具有重要作用(Honda et al, 2006, Tanaka et al, 2000)。干扰素调节因子7 (irf7)是诱导Ⅰ型干扰素表达的关键因子,于1997年首次报道(Zhang et al, 1997),其最重要功能是诱导IFNα/β产生,从而诱导机体抗病毒功能(Fitzgerald et al, 2003)。目前,已在斑马鱼(Danio rerio) (Xiang et al, 2010)、鳜鱼(Siniperca chuatsi) (Sun et al, 2007)、牙鲆(Paralichthys olivaceus) (Hu et al, 2010)等鱼类中被鉴定,并揭示了鱼类irf7在先天免疫中的作用,。
斑石鲷(Oplegnathus punctatus)具有外形美观、肉质细嫩、生长速度快、成活率高等优点,深受消费者喜爱。2014年以来,随着斑石鲷人工繁育和养殖取得成功,斑石鲷已成为我国名贵海水养殖品种之一。但随着国内水产养殖业集约化水平不断提高,病毒病成为制约斑石鲷健康养殖的主要问题。本研究通过克隆斑石鲷irf7基因,分析在虹彩病毒(Iridovirus)刺激后各免疫组织的表达模式,有助于研究斑石鲷抗病毒及细菌免疫应答中的功能,旨在为阐述斑石鲷免疫机制提供理论基础。
1 材料与方法 1.1 实验材料本实验所用斑石鲷购自山东莱州明波水产有限公司,体重为(150±15) g,健康无病。实验前在水箱中暂养1周,水温维持在25℃左右。每日投喂饲料,保持溶氧充足,每日用清洁海水换水1次。
1.2 样品处理和采集 1.2.1 健康斑石鲷组织样品采集随机选取4条健康斑石鲷,经MS-222麻醉后抽取血液,解剖后取肝、脾、肾、头肾、心脏、肠、鳃、脑、皮肤和肌肉等组织,将所取组织迅速置于液氮中,随后转移至–80℃冰箱中保存,用于提取总RNA。
1.2.2 虹彩病毒感染斑石鲷及组织样品采集选取15条健康斑石鲷用于斑石鲷虹彩病毒感染实验。本实验所用斑石鲷虹彩病毒由华南农业大学秦启伟教授提供。将斑石鲷虹彩病毒液用PBS稀释至1×109 copies/mL。将斑石鲷麻醉后腹腔注射病毒液,每尾注射100 µL。分别在0、1、4、7和10 d共5个时间点取样,每个时间点取3条鱼,每条鱼取肝脏、脾脏、肾脏3个组织。将组织立即放入液氮中冷冻,并随后放入–80℃冰箱,用于后续提取RNA。
1.2.3 poly I: C刺激斑石鲷脑细胞系将单层培养、生长状态良好的斑石鲷脑细胞系铺到12孔板上,24 h后细胞覆盖率达到90%左右。将12孔板中的旧培养基吸弃,使用无菌PBS (0.01 mmol/L, pH 7.2)洗涤3次。使用无菌PBS (0.01 mmol/L, pH 7.2)配制poly I: C (上海源叶生物科技有限公司)母液,浓度为25 mg/ml。按照低、中、高浓度(50、100、200 µg/mL),配制含有poly I: C的L-15培养基(北京索莱宝宝科技有限公司),加入培养板中,每个浓度3个重复。对照组加入与高浓度组相同体积的PBS。在刺激6 h后,吸出培养基,加入Trizol (TaKaRa)收集细胞,保存于–80℃冰箱待用。细胞实验重复3次。
1.3 总RNA提取与cDNA合成使用Trizol对所有健康以及感染后样品提取总RNA,提取后使用Pultton核酸浓度仪测定浓度及A260 nm/ A280 nm比值,使用琼脂糖凝胶电泳检测所提RNA的质量。利用合格的RNA,使用PrimeScript™ Ⅱ 1st Strand cDNA Synthesis试剂盒(TaKaRa)合成cDNA。
1.4 Opirf7基因ORF区验证根据测序结果,获得Opirf7基因的ORF区序列,使用Primer 5.0软件设计引物Opirf7-F/Opirf7-R,使用不同组织混合cDNA模板进行PCR扩增。总体系为15 µL:PCR Mix (TaKaRa) 7.5 µL,Opirf7-F 1 µL,Opirf7-R 1 µL,cDNA模板1 µL,ddH2O 4.5 µL。PCR扩增程序:95.8℃预变性5 min;95℃变性30 s,59℃退火30 s,72℃延伸30 s,35个循环;72℃延伸7 min,4℃保存。
将PCR扩增产物进行凝胶电泳检测,条带大小与目的片段相一致。将正确目的片段切下,使用胶回收试剂盒(诺唯赞)对目的片段进行回收纯化。将纯化后的产物连接到T载体中,转化Trans1-T1感受态细胞(全式金)中,冰浴30 min后42℃热激30 s,置于冰上2 min后加入500 µL无抗LB培养基,37℃摇床摇菌1 h,取200 µL菌液于超净工作台中涂板,培养过夜。次日,挑取单克隆并进行菌液PCR验证。将条带大小正确的样品送青岛擎科生物技术有限公司测序。
1.5 生物信息学分析及构建系统发育树使用DNAstar软件的Editseq分析Opirf7 ORF区,预测氨基酸序列,并推测分子量和等电点。使用网站(http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/)预测其信号肽,使用网站(http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/)进行跨膜结构分析。使用SMART(http://smart.embl-heidelberg.de/)进行结构域预测。通过DNAMAN 8软件进行氨基酸同源比对。检索不同生物irf7序列(表 2),导入MEGA X软件进行氨基酸多重比对,采用邻接法(neighbor-joining, NJ)构建进化树。
1.6 Opirf7实时荧光定量检测使用实时荧光定量(qRT-PCR)检测斑石鲷健康个体、虹彩病毒感染及poly I: C感染细胞后Opirf7的表达模式。根据测序所获得的ORF序列设计Opirf7和内参基因的引物(表 1)。实验步骤参照TaKaRa荧光定量试剂盒,采用两步法,反应程序:95℃预变性30 s, 95℃ 5 s, 58℃ 30 s,共40个循环;60℃ 30 s,72℃ 30s,溶解曲线温度55~95℃。以β-actin为内参进行qRT-PCR分析。利用2–ΔΔCt方法计算Opirf7基因的相对表达量。实验数据采用SPSS软件进行方差分析(one-way ANOVA),设定P值< 0.05时为差异显著。使用GraphPad Prism作图。
以斑石鲷组织cDNA为模板,获得斑石鲷Opirf7基因ORF区全长为1332 bp,编码443个氨基酸。通过氨基酸序列分析,预测其分子量为50.5 kDa,等电点为5.546 (图 1)。通过蛋白结构域预测,发现其含有IRF家族保守结构域,包括DNA结合域(DNA binding domain, DBD)、IRF相关结构域(IRF-associated domain, IAD)和SRD结构域(Serine-rich domain, SRD) (图 2)。其中,DBD位于多肽N末端,由第4~112个氨基酸组成,该区域包含4个色氨酸重复区域;IAD位于多肽中间部分(第222~395个氨基酸);丝氨酸富含区位于多肽末端。
经BLAST比对发现,斑石鲷irf7氨基酸序列与其他硬骨鱼类的irf7具有较高同源性。斑石鲷irf7与尖吻鲈(Lates calcarifer)的相似性为82.92%,与大黄鱼(Larimichthys crocea)、牙鲆、半滑舌鳎(Cynoglossus semilaevis)的相似性分别为81.99%、79.95%、73.74%,与哺乳动物小鼠(Mus musculus)和人(Homo sapiens)的相似性较低,分别为31.00%和30.00%(图 3)。
通过MEGA X软件采用Neighbor-joining法构建了Opirf7的系统进化树(图 4)。发育分析显示,斑石鲷Opirf7与其他硬骨鱼类的irf7聚为一支,鸡(Gallus gallus)、小鼠猕猴(Macaca mulatta)和人类的irf7聚为另一大支。斑石鲷Opirf7在进化上与大黄鱼、
Opirf7在健康斑石鲷个体11个组织中均有表达。其中,在肝脏中表达量最高,在皮肤、肌肉、脑、肠等组织中表达量较低,在头肾中表达量最低(图 5)。
虹彩病毒刺激斑石鲷后,Opirf7的表达量在脾脏、肾脏中显著上调。脾脏中,Opirf7的表达量在第4天升高至对照组的15倍,在第7天表达量最高,约为对照组的37倍,在第10天表达量降低。在肾脏中,第4天升高2.5倍,第7天时达到表达峰值,为对照组的4倍。在肝脏组织中,Opirf7表达量稍有变化,但差异并不显著。
2.5 poly I: C刺激斑石鲷脑细胞系Opirf7的表达在病毒类似物poly I: C感染的斑石鲷脑细胞系中,irf7的表达呈现先升高后降低的趋势,在50 µg/mL poly I: C (低浓度)刺激时表达量显著升高(13~14倍),在100 µg/mL poly I: C (中浓度)刺激时表达量也显著升高(14~17倍),而在200 µg/mL poly I: C (高浓度)刺激时,irf7的表达量仍显著高于对照组(8~9倍),推测200 μg/mL浓度较高,对细胞造成一定的损伤,因而表达水平有所下降。
3 讨论本研究通过PCR技术获得了斑石鲷Opirf7基因CDS区序列,并对其序列进行分析。预测其编码蛋白的分子量为50.5 kDa,无信号肽及跨膜区。氨基酸序列比对结果发现,斑石鲷Opirf7基因编码的多肽具有典型的DNA结合域(DBD)、干扰素相关区(IAD)和丝氨酸富含区(SRD)。在哺乳动物中,所有IRF家族成员中的DBD通常包含一个5-色氨酸重复序列,而在硬骨鱼类的DBD则只有4个间隔的色氨酸重复序列。这些间隔的色氨酸重复序列通过形成螺旋–转角–螺旋结构与靶基因启动子中的IFN刺激反应元件(ISRE)和IRF调节元件(IRFE)共有序列结合(Escalante et al, 1998; Paun et al, 2007)。IAD是除IRF-1和IRF-2以外的所有IRF家族成员均具有的结构域。在哺乳动物中,IAD可通过形成IRF同源/异源二聚体与其他转录因子结合以激活干扰素(Eroshkin et al, 1999)。SRD仅存在于IRF-3/5/7中(Holland et al, 2009; Xu et al, 2010),与病毒诱导的磷酸化有关。通过氨基酸多重序列比对发现,斑石鲷Opirf7与哺乳类、鸟类及其他硬骨鱼类irf7的结构域特征高度保守。Opirf7与硬骨鱼类相似性较高,与尖吻鲈的相似性为82.92%,而与哺乳类、鸟类相似性较低。系统进化结果表明,斑石鲷与硬骨鱼类的irf7聚为一大支,而与鸟类、哺乳类进化关系较远。
在鱼类中,irf7基因在各物种中表达量最高的组织并不完全一致。在尖吻鲈中,相对表达量较高组织为鳃和后肠(Krishnan et al, 2019);在斜带石斑鱼(Epinephelus coioides)的脾和肠中表达量较高(Cui et al, 2011);在赤眼鳟(Squaliobarbus curriculus)的脾中表达量最高,而在肝脏中表达量最低(Zhao et al, 2017)。本研究中,对健康斑石鲷组织中Opirf7的相对表达量分析发现,Opirf7在肝脏中的表达量远高于其他组织,说明肝脏可能在抗病毒免疫防御中也发挥一定的作用。
研究表明,irf7在硬骨鱼类中参与细菌、病毒感染后的免疫应答。欧洲鳗鲡(Anguilla anguilla)感染迟缓爱德华氏菌(Edwardsiella tarda)后,其免疫组织中的irf7表达量显著上调;迟缓爱德华氏菌或细胞肿大虹彩病毒(Megalocytivirus)刺激都能导致半滑舌鳎各免疫组织irf7表达量显著上调(Zhang et al, 2015)。在本研究中,虹彩病毒感染斑石鲷后,脾脏、肾脏组织中Opirf7的表达量显著上调,总体趋势表现为先升高至峰值,随后逐渐恢复至正常水平。在细胞水平中也发现了相似的表达趋势,说明Opirf7对病毒刺激的响应非常迅速,有可能参与斑石鲷抗病毒感染机制。
综上所述,本研究通过对Opirf7基因克隆、序列特征及表达模式分析,初步表明Opirf7参与斑石鲷免疫应答过程,为进一步研究Opirf7在斑石鲷抗病免疫中的作用机制奠定了基础。
BARNES B, LUBYOVA B, PITHA P M. On the role of IRF in host defense. Journal of Interferon and Cytokine Research, 2002, 22(1): 59-71 DOI:10.1089/107999002753452665 |
CUI H, YANG Y, WEI J, et al. Identification and functional characterization of an interferon regulatory factor 7-like (IRF7-like) gene from orange-spotted grouper, Epinephelus coioides. Developmental and Comparative Immunology, 2011, 35(6): 672-684 DOI:10.1016/j.dci.2011.01.021 |
EROSHKIN A, MUSHEGIAN A. Conserved transactivation domain shared by interferon regulatory factors and Smad morphogens. Journal of Molecular Medicine, 1999, 77(5): 403-405 DOI:10.1007/s001090050369 |
ESCALANTE C R, YIE J, THANOS D, AGGARWAL A K. Structure of IRF-1 with bound DNA reveals determinants of interferon regulation. Nature, 1998, 391(6662): 103-106 DOI:10.1038/34224 |
FITZGERALD K A, ROWE D C, BARNES B J, et al. LPS-TLR4 signaling to IRF-3/7 and NF-κB involves the toll adapters TRAM and TRIF. Journal of Experimental Medicine, 2003, 198(7): 1043-1055 DOI:10.1084/jem.20031023 |
HOLLAND J W, BIRD S, WILLIAMSON B, et al. Molecular characterization of IRF3 and IRF7 in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss: Functional analysis and transcriptional modulation. Molecular Immunology, 2009, 46(2): 269-285 |
HONDA K, TANIGUCHI T. IRFs: Master regulators of signalling by Toll-like receptors and cytosolic pattern- recognition receptors. Nature Reviews Immunology, 2006, 6(9): 644-658 DOI:10.1038/nri1900 |
HU G, YIN X, XIA J, et al. Molecular cloning and characterization of interferon regulatory factor 7 (irf7) in Japanese flounder, Paralichthys olivaceus. Fish and Shellfish Immunology, 2010, 29(6): 963-971 DOI:10.1016/j.fsi.2010.08.002 |
KRISHNAN R, KURCHETI P P, MUSHTAQ Z, et al. Interferon-regulatory factors, IRF3 and IRF7 in Asian seabass, Lates calcarifer: Characterization, ontogeny and transcriptional modulation upon challenge with nervous necrosis virus. Fish and Shellfish Immunology, 2019, 89: 468-476 DOI:10.1016/j.fsi.2019.03.073 |
NGUYEN H, HISCOTT J, PITHA P M. The growing family of interferon regulatory factors. Cytokine and Growth Factor Reviews, 1997, 8(4): 293-312 DOI:10.1016/S1359-6101(97)00019-1 |
PAUN A, PITHA P M. The IRF family, revisited. Biochimie, 2007, 89(6/7): 744-753 |
STEIN C, CACCAMO M, LAIRD G, et al. Conservation and divergence of gene families encoding components of innate immune response systems in zebrafish. Genome Biology, 2007, 8(11): R251 DOI:10.1186/gb-2007-8-11-r251 |
SUN B J, CHANG M X, SONG Y, et al. Gene structure and transcription of IRF-1 and irf7 in the mandarin fish Siniperca chuatsi. Veterinary Immunology and Immunopathology, 2007, 116(1/2): 26-36 |
TANAKA N, TANIGUCHI T. The interferon regulatory factors and oncogenesis. Seminars in Cancer Biology, 2000, 10(2): 73-81 DOI:10.1006/scbi.2000.0310 |
TANIGUCHI T, OGASAWARA K, TAKAOKA A, et al. IRF family of transcription factors as regulators of host defense. Annual Review of Immunology, 2001, 19: 623-655 DOI:10.1146/annurev.immunol.19.1.623 |
VEALS S A, SCHINDLER C, LEONARD D, et al. Subunit of an alpha-interferon-responsive transcription factor is related to interferon regulatory factor and Myb families of DNA-binding proteins. Molecular and Cellular Biology, 1992, 12(8): 3315-3324 |
XIANG Z, DONG C, QI L, et al. Characteristics of the interferon regulatory factor pairs zfIRF5/7 and their stimulation expression by ISKNV Infection in zebrafish (Danio rerio). Developmental and Comparative Immunology, 2010, 34(12): 1263-1273 DOI:10.1016/j.dci.2010.07.003 |
XU Q Q, CHANG M X, XIAO F S, et al. The gene and virus-induced expression of IRF-5 in grass carp Ctenopharyngodon idella. Veterinary Immunology and Immunopathology, 2010, 134(3/4): 269-278 |
ZHANG J, LI Y X, HU Y H. Molecular characterization and expression analysis of eleven interferon regulatory factors in half-smooth tongue sole, Cynoglossus semilaevis. Fish and Shellfish Immunology, 2015, 44(1): 272-282 DOI:10.1016/j.fsi.2015.02.033 |
ZHANG L, PAGANO J S. IRF-7, a new interferon regulatory factor associated with Epstein-Barr virus latency. Molecular and Cellular Biology, 1997, 17(10): 5748-5757 DOI:10.1128/MCB.17.10.5748 |
ZHANG R, KANG C, PENG L, et al. Regulation of T helper cell differentiation by interferon regulatory factor family members. Immunologic Research, 2012, 54(1/2/3): 169-176 |
ZHAO X, WANG R, LI Y, et al. Molecular cloning and functional characterization of interferon regulatory factor 7 of the barbel chub, Squaliobarbus curriculus. Fish and Shellfish Immunology, 2017, 69: 185-194 DOI:10.1016/j.fsi.2017.08.024 |